Можно ли давать бифидумбактерин новорожденным: Бифидумбактерин 5 доз 10 шт. лиофилизат для приготовления суспензии для приема внутрь и местного применения флакон

Бифидумбактерин для новорожденных

Бифидумбактерин для новорожденных: показания к применению

Такой препарат, как бифидумбактерин, назначается новорожденным, если подозревается неправильное заселение кишечника микроорганизмами. Препарат имеет широкое применение в педиатрической практике и, как утверждают врачи, он не только безвредный, но и полезный. Он нормализует работу кишечного тракта, восстанавливает кишечную микрофлору, а также обладает иммуномодулирующими свойствами.

Данное лекарственное средство относится к группе пробиотиков, которые содержат живые бифидобактерии. Прием бифидумбактерина имеет показания во всех случаях, поскольку даже изначально в процессе родов стерильный кишечник новорожденного заселяется маминой микрофлорой. В первые две недели жизни малыша в его кишечнике обосновываются кишечные палочки, лакто- и бифидобактерии. На протяжении следующих шести месяцев количество этих бактерий постоянно растет и нормализуется их деятельность.

Если организм новорожденного будет испытывать недостаток любого вида бактерий, то хорошо, если это вызовет только проблемы с кишечником. Бывают случаи, когда начинаются нарушения обмена веществ, снижение иммунитета, рахит. Бифидумбактерин для новорожденных может назначаться для лечения длительных расстройств кишечника уже с первых дней жизни малыша.

Когда важно применение бифидумбактерина для новорожденных

Препарат используется с целью профилактики развития колита и кишечных дисфункций при применении антибактериальных препаратов. Бифидумбактерин назначается при комплексном лечении пневмонии, а также других инфекционных и гнойных заболеваний.

Применение препарата показано новорожденным, родившимся ранее срока или имеющим признаки недоношенности, которым в целях профилактики осложнений назначены антибиотики. Также бифидумбактерин имеет показания для детей, если мама страдала токсикозами или тяжелыми болезнями внутренних органов во время беременности.

Рекомендуется препарат новорожденным, матери которых в начале грудного вскармливания испытывали затруднения. Также желательно применение бифидумбактерина при немедленном переводе маленького ребенка на искусственное вскармливание.

Все эти неблагоприятные факторы провоцирует так называемый дисбиоз кишечника, приводящий к запорам или поносам, болям в животике, вздутии живота и как следствие - к беспокойству и плохому сну малыша. В результате ребенок может плохо набирать вес и даже отстать в психосоматическом развитии.

Полезные микроорганизмы, которые содержит бифидумбактерин, заселяются в кишечник новорожденного, что способствует усвоению питательных веществ. Улучшается перистальтика кишечника, предупреждается развитие бродильной и гнилостной флоры. После лечения ребенок становится спокойным, хорошо спит и кушает, а также набирает необходимый ему вес.

Как давать бифидумбактерин новорожденным

При назначении бифидумбактерина новорожденным в инструкции указаны следующие варианты применения. Когда ребенок находится на грудном вскармливании, то препарат смешивается с молоком, а если на искусственном вскармливании, то с детскими смесями. При лечении до 6 месяцев рекомендуется прием 3 раза в день по 1 пакету бифидумбактерина. При необходимости после 2-3 дней дозировку можно увеличить до 6 раз.

Продолжительность курса зависит от результатов проведенного лечения и составляет около 3-х недель. Повторный курс может быть назначен только через месяц. В целях профилактики дисбактериоза препарат применяется в день по 1 пакету на протяжении 7-10 дней.

Днем бифидумбактерин дают в жидком виде 2 раза в день за полчаса до основного кормления, для это порошок нужно развести в молоке. На ночь применяются свечи. При таком комбинированном лечении новорожденный малыш быстро поправляется.

Как показывают отзывы врачей, бифидумбактерин не имеет никаких противопоказаний. Единственное, что указано - противопоказанием может стать первичная непереносимость молока. В иных случаях все дети хорошо переносят препарат и начинают быстро набирать вес.

Таким образом, препарат бифидумбактерин признается самым эффективным для новорожденных для предупреждения и лечения дисбиоза кишечника. Важно и то, что это российский препарат, соответственно цена его не такая высокая по сравнению с зарубежными аналогами, которым он нисколько не уступает.

Бифидумбактерин для Новорожденных (и Грудничков!)

Опытные мамы и папы уверяют, что Бифидумбактерин для новорожденных и грудничков является эффективным и проверенным средством в борьбе с коликами и вздутием живота. Безопасно ли это средство, и как давать Бифидумбактерин грудничку?


Содержание:

Работа желудочно-кишечного тракта у младенца

Чем полезен Бифидумбактерин детям

В какой форме давать Бифидумбактерин грудничкам

Бифидумбактерин или Бифидумбактерин Форте для новорожденных — что лучше?

Бифидумбактерин: инструкция для новорожденных

Сухой Бифидумбактерин - как разводить?

Противопоказания


Кишечник едва родившегося младенца – это воплощение чистоты, совершенная медицинская стерильность. В нем пока не содержатся ни «плохие», ни «хорошие» бактерии, помогающие переваривать пищу. Первые микроорганизмы ребенок получает только с материнским молоком, но зачастую их оказывается недостаточно.

Когда бактерий в организме слишком мало, организм не успевает справляться с поступающей в него пищей, и у малыша начинаются проблемы с работой ЖКТ, появляются колики и дисбактериоз.

В этом случае бифидобактерии для новорожденных становятся средством спасения. Это микроскопические живые организмы, идентичные бактериям, которые содержатся в кишечнике человека – попадая в организм младенца, они налаживают работу желудочно-кишечного тракта. Давайте разберемся, как они работают и зачем нужны?

Работа желудочно-кишечного тракта у младенца

Значимость правильной работы пищеварительной системы в целом и кишечника в частности невозможно переоценить. Большинство питательных веществ усваивается именно там – поэтому, когда кишечник работает неправильно, и организму не хватает энергии, плохое настроение, слабость и недомогания обеспечены.

Не обошло это стороной и новорожденных – для едва родившихся малышей правильная работа ЖКТ важна ничуть не меньше, чем для взрослых! При малейших сбоях в его работе у младенца появятся вздутия и колики, что доставляет много беспокойства и ему, и его родителям.

Работа желудочно-кишечного тракта строится на взаимодействии бактерий. Поступая в организм с молоком матери, полезные бактерии формируют колонии и защищают место своего обитания от незваных гостей: они обволакивают кишечник защитной пленкой, способствующей правильной работе кишечника, и помогают формировать нервные окончания для приема иной пищи, кроме молока или детской смеси.

Однако, когда полезных бактерий в организме оказывается недостаточно, у малыша начинаются спазматические колики. Поступившая в организм пища не успевает перерабатываться целиком, начинает бродить и выделять газовые пузырьки, вызывая болезненную реакцию.

Важно, чтобы бактерий в кишечнике ребенка было достаточно: малейшая их нехватка приведет к спазмам, авитаминозу, дисбактериозу и другим неприятным состояниям, которые придется лечить.

Деятельность желудочно-кишечного тракта отражается на всем организме маленького человека, поэтому правильная его работа – залог здоровья вашего малыша. И, когда полезных бактерий в нем оказывается недостаточно, Бифидумбактерин для новорожденных и грудничков – первый помощник. В качестве активного компонента препарата выступает бифидобактерия бифидум.

Чем полезен Бифидумбактерин детям

Этот замечательный препарат с бифидобактериями в основе станет настоящим спасением для малыша, имеющего проблемы с пищеварительной системой. Живые микроорганизмы в его составе, идентичны полезным бактериям в кишечнике человека, при попадании в организм начнут выполнять их функцию: застилать кишечник защитной пленкой, развивать нервные окончания для усваивания полезных веществ, бороться с болезнетворными микроорганизмами.

Препарат Бифидумбактерин быстро устранит большинство проблем, возникающих в ЖКТ малютки: дисбактериоз, колики, нехватку питательных веществ, способную даже привести к рахиту. Не менее полезно будет назначение такого препарата малышам с анемией и диатезом, а также детям, переходящим на новое питание: к примеру, с грудного молока на детскую смесь.

Однако важно отметить, что бактерии бифидум для новорожденных и грудничков не стоит использовать в качестве профилактики: препарат назначает исключительно педиатр при серьезных отклонениях в работе желудочно-кишечного тракта, когда неправильная работа микроорганизмов становится причиной болезней и недомогания.

Назначать Бифидумбактерин для детей самостоятельно нельзя!

Если у вашего малыша все в порядке с полезными бактериями, а вы станете давать ему препарат, то это может спровоцировать дисбактериоз именно их перенасыщением.

Бифидумбактерин, помимо бифидобактерий в составе, может также оказывать антибактериальное воздействие на болезнетворные бактерии. Таким образом, этот препарат не только нормализует работу желудочно-кишечного тракта, а еще и восстанавливает иммунитет.

В какой форме давать Бифидумбактерин грудничкам

Препарат выпускается в нескольких разных формах:

  • сухой Бифидумбактерин – порошок во флаконах и фольгированных пакетиках;
  • жидкий Бифидумбактерин в ампулах;
  • в капсулах;
  • в таблетках;
  • свечи Бифидумбактерин.

Для новорожденных и грудных детей рекомендуется использовать препарат Бифидумбактерин детский, произведенный в жидком виде, а так же в виде порошков или свечей.

Бифидумбактерин или Бифидумбактерин Форте для новорожденных — что лучше?

Бифидумбактерин Форте считается улучшенным лекарственным препаратом.

Он отличается биомассой живых бифидобактерий, адсорбированных на косточковом активированном угле. Это позволяет препарату, попав в кишечник, действовать быстрее.

Поэтому, несомненно, при серьезных заболеваниях лучше использовать Бифидумбактерин форте.

Бифидумбактерин: инструкция для новорожденных

Конечно же, Бифидумбактерин новорожденным и грудничкам должен назначаться сугубо индивидуально, в зависимости от того, в каком состоянии сейчас находится пищеварительная система младенца: за этим должен следить педиатр. Его же задача назначать подходящую схему приема.

В зависимости от состояния ребенка врач может назначить от 2 до 5 доз 1-3 раза в сутки. Длительность курса – до 21 дня, возможен повтор через 1 месяц.

Родителям следует знать, что в таблетке и свече содержится по 1 дозе препарата, остальные формы препарата содержат по 5 доз.

Желательно принимать лекарство за полчаса до еды, либо спустя 1 час после. То есть препарат для достижения максимальной эффективности нужно пить на пустой желудок. В случае с младенцами добиться этого достаточно сложно. Поэтому допустимо разводить Бифидумбактерин для новорожденных молоком. Грудничкам, находящимся на искусственном вскармливании, порошок Бифидумбактерин можно добавлять и разводить вместе с порошковыми смесями.

Сухой Бифидумбактерин - как разводить?

Порошок следует высыпать в небольшую емкость, затем добавить кипяченую воду из расчета 5 мл на 1 дозу (один пакетик содержит 5 доз). Средство необходимо тщательно перемешать, выждать около 10 минут для максимального растворения (препарат полностью не растворяется).

Приготовленный раствор хранению не подлежит (бифидобактерии в нем быстро погибают), а вот оставшуюся нерастворенной часть порошка можно хранить, но не более суток.

Противопоказания

Бифидумбактерин для грудничков и новорожденных в допустимых инструкциях дозах совершенно не опасен, поскольку не имеет никаких побочных действий и противопоказаний. Но есть оно «НО!». Возможна аллергическая реакция на один из компонентов препарата.

Если у вашего малыша есть непереносимость какого-либо из следующих веществ, воздержитесь от приема и проконсультируйтесь о замене препарата с педиатром:

  • лактоза;
  • крахмал высушенный;
  • стеарат кальция.

Если вы не знали об аллергии у своего малыша на указанные компоненты, но обнаружили у него усиленное вздутие или колики после приема, иные проявления аллергической реакции, прекратите применение Бифидумбактерина немедленно. Существуют аналоги этого препарата, не содержащие в составе этих веществ – можете попробовать принимать их.

Правильная работа желудочно-кишечного тракта младенца – это очень важно. Если не помогать ребенку вовремя, страдания в младенческом возрасте могут обратиться проблемами с пищеварением во взрослом: поэтому, если вашему ребенку не хватает полезных бактерий, смело применяйте Бифидумбактерин, но предварительно проконсультируйтесь со специалистом.


Как принимать Бифидумбактерин

Бифидумбактерин Форте инструкция по применению: показания, противопоказания, побочное действие – описание Bifidumbacterin Forte капс. 50 млн.КОЕ (5 доз): банки 10, 18 или 30 шт. (18724)

Препарат принимают внутрь во время приема пищи, при необходимости - независимо от приема пищи.

Препарат в форме капсул назначают взрослым и детям в возрасте 3 лет и старше. Капсулы принимают, запивая кипяченой водой или кисломолочным продуктом. Для детей при необходимости капсулы вскрывают, и смешивают ее содержимое с жидкой пищей, предпочтительно с кисломолочным продуктом. Содержимое капсулы можно смешать с 20-50 мл кипяченой воды комнатной температуры, при этом образуется мутная взвесь с частичками сорбента черного цвета. Полученную водную взвесь следует выпить, не добиваясь полного растворения.

Препарат в форме порошка для приема внутрь назначают взрослым и детям всех возрастных групп. Порошок перед употреблением смешивают с жидкой пищей, предпочтительно с кисломолочным продуктом, для новорожденных и грудных детей - с материнским молоком или смесью для искусственного вскармливания. Порошок можно смешать с 30-50 мл кипяченой воды комнатной температуры, при этом образуется мутная взвесь с частичками сорбента черного цвета. Полученную водную взвесь следует выпить, не добиваясь полного растворения.

В зависимости от тяжести заболеваний Бифидумбактерин форте применяют в обычных или увеличенных дозах.

С целью лечения препарат в обычных дозах назначают пациентам всех возрастных групп.

Обычная доза для взрослых составляет по 2 капсулы или по 2 пакетика 2-3 раза/сут; для детей в возрасте 3 лет и старше - по 1 капсуле 3-4 раза/сут, в возрасте 1 года и старше - по 1 пакетику 3-4 раза/сут, в возрасте до 1 года - по 1 пакетику 2-3 раза/сут.

Курс лечения при острых кишечных инфекциях и пищевых токсикоинфекциях составляет 5-7 дней, при других заболеваниях - 15-21 день, в зависимости от характера и тяжести заболевания. При необходимости курсы лечения можно повторить 2-3 раза, каждый курс проводится через месяц после окончания предыдущего курса лечения.

При хирургической патологии препарат применяют в течение 3-5 дней до операции и в течение 10-15 дней после операции: взрослым назначают по 2 капсулы или по 2 пакетика 3 раза/сут; детям в возрасте 3 лет и старше - по 1 капсуле 3-4 раза/сут, в возрасте 1 года и старше - по 1 пакетику 3-4 раза/сут, в возрасте до 1 года - по 1 пакетику 3 раза/сут.

С целью лечения препарат в увеличенных дозах назначают взрослым и детям в возрасте 1 года и старше.

При острой кишечной инфекции и острой респираторной вирусной инфекции препарат назначают с первых суток заболевания: взрослым - по 10 капсул или по 10 пакетиков 3 раза/сут; детям в возрасте 3 лет и старше - по 3-5 капсул каждые 2 ч до 6 раз/сут, в возрасте 1 года и старше - по 5 пакетиков 6 раз/сут. Курс лечения составляет 1-3 дня, в зависимости от тяжести состояния.

При хронических заболеваниях ЖКТ назначают взрослым по 10 капсул или 10 пакетиков 1-3 раза/сут; детям в возрасте 3 лет и старше - по 5 капсул 1-3 раза/сут, в возрасте 1 года и старше - по 5 пакетиков 1-3 раза/сут. Курс лечения составляет 10-14 дней.

При применении у детей капсулы рекомендуется вскрывать и смешивать их содержимое с 50 мл кипяченой воды комнатной температуры.

С целью профилактики Бифидумбактерин форте назначают взрослым и детям старше 3 лет по 1-2 капсулы или по 1-2 пакетика 1-2 раза/сут; детям в возрасте до 1 года - по 1 пакетику 1 раз/сут. Профилактический курс составляет 10-15 дней 2-3 раза/год. Для профилактики внутрибольничных инфекций в родильных домах и больницах препарат применяют 5-10 дней.

Как давать новорожденным «Бифидумбактерин» |Блог о саморазвитии

В ряде случаев врачи рекомендуют давать новорожденному ребенку различные препараты, основное предназначение которых — нормализация микрофлоры кишечника детского организма. Один из самых востребованных препаратов такого рода — бифидумбактерин, который заселяет в кишечник полезные микроорганизмы, без которых нормальное пищеварение попросту невозможно.

Вам понадобится:

  1. Бифидумбактерин;
  2. Кипяченая вода.

Для начала Вы должны приобрести бифидумбактерин для новорожденных, который выпускается, как правило, в виде сухого порошка. Необходимо отметить, что для его применения необходимо его предварительно развести с кипяченой водой. Также обратите внимание на инструкцию к данному препарату, где написано, что каждую его дозу необходимо разводить в 5 мл кипяченной воды. Однако Вы понимаете, что дать выпить грудному ребенку 25 мл воды, которая получается при разведении содержимого пузырька, практически невозможно. Поэтому для того, чтобы бифидумбактерин попал в организм Вашего малыша, разведите его немного меньшим количеством жидкости, чем это указано в инструкции.

Налейте чайную ложку кипяченой теплой воды в пузырек с препаратом порошкового вида и дождитесь его полного растворения. Как правило, это занимает всего несколько минут. После этого бифидумбактерин готов к применению.

По возможности, старайтесь давать его своему малышу за полчаса часа до еды. Также необходимо отметить, что для новорожденных не возбраняется добавлять данный препарат в питательные смеси.

Курс лечения бифидумбактерином зависит от тяжести заболевания. Однако не имеет смысла принимать данный препарат менее недели, даже если родители наблюдают выраженные улучшения в деятельности кишечника малыша.

Недавно в продаже появился жидкий бифидумбактерин. Я рекомендую давать его малышу в качестве профилактики дисбактериоза трижды в день.

Читайте также:

Как разводить бифибумбактерин для новорожденных?

Как известно, иногда новорожденным потребуется «помощь» в виде полезных бактерий для пищеварительной системы, если их желудочно-кишечный тракт был заселен условно-патогенной флорой. В результате этого малыш часто плачет, срыгивает, происходит вздутие живота, ребенка мучает газообразование и колики. В некоторых случаях врачи назначают такой эффективный препарат, как бифидумбактерин, который содержит живые бифидобактерии, являющиеся в норме частью микрофлоры желудка. Но для многих неопытных мам совсем непонятно, как разводить бифидумбактерин для новорожденных. Постараемся помочь!


Бифидумбактерин - способ применения для новорожденных

Вообще, этот лекарственный препарат можно найти в нескольких формах: сухой и жидкой. Первая форма выпускается в виде таблеток и порошка в пакетиках, ампулах, флаконах. Правда, для младенцев разрешен только порошок. Бифидумбактерин жидкий для новорожденных выпускается во флаконах.

Как давать бифидумбактерин новорожденному?

Понятно, что способ лечения микрофлоры ребенка этим пробиотиком и его дозировка напрямую зависит от того, какую форму выпуска вы приобрели.

Вообще, лекарство можно давать перед кормлением. Если вы используете бифидумбактерин сухой для новорожденных во флаконах, то сначала необходимо приготовить суспензию. Для этого в стакан нужно влить кипяченной воды комнатной температуры из расчета 5 мл на каждую дозу препарата. Как правило, количество доз указывается на упаковке. Открыв флакон, в него из стакана вливается небольшое количество воды для растворения. Затем содержимое флакона следует смешать с водой в стакане. В 1 чайной ложке будет 1 доза лекарства. При желании вместо воды для растворения можно использовать грудное молоко или смесь. Дозировка бифидумбактерина для новорожденных составляет 5 доз за раз дважды в день. Обратите внимание, что хранить приготовленную суспензию нельзя!

Касательно того, как разбавлять бифидумбактерин новорожденным в виде порошка в пакетиках, то готовится раствор тем же способом, что и из флакона. В пакетике рассчитано 5 доз, на каждую из которых необходимо взять по 1 чайной ложке воды или молока. Дозировка лекарства составляет по одному пакетику порошка 2-3 раза в сутки.

Бифидумбактерин жидкий выпускается в виде концентрата бифидобактерий. Готовить раствор нет необходимости – лекарство уже готово к применению. Флакон с препаратом следует хорошо встряхнуть перед употреблением. Новорожденным дают по 0,5 -1 мл средства 2-3 раза в день.

В любом случае, решаясь воспользоваться бифидумбактерином для новорожденных от коликов, дисбактериоза или профилактики этих состоянии, обязательно посоветуйтесь с педиатром!

противопоказания, побочное действие, дозировки, состав – в справочнике лекарственных средств

Бифидумбактерин сухой при кишечных заболеваниях применяют перорально, а в акушерско-гинекологической практике интравагинально.

С флакона удаляют металлический колпачок и резиновую пробку. Содержимое флакона растворяют кипяченой водой комнатной температуры из расчета 1 чайная ложка на 1 дозу лекарственного средства.

Способ растворения:

  • в стакан наливают требуемое количество чайных ложек воды (в соответствии с числом доз, указанных на этикетке тары), затем из стакана переносят во флакон небольшое количество воды для растворения сухой массы. После растворения содержимое флакона переносят в тот же стакан и перемешивают.

Одна чайная ложка растворенного таким образом лекарственного средства составляет одну дозу. Необходимое количество доз (соответственно чайных ложек) выпивают за 20-30 мин до еды. Грудным детям лекарственное средство можно давать непосредственно перед кормлением.

При кишечных заболеваниях длительность курса лечения бифидумбактерином определяется тяжестью клинических проявлений, возрастом больного и составляет 2-4 недели, а в отдельных случаях до 3-х месяцев. С профилактической целью назначают по 5 доз 1-2 раза/сут в течение 1-2 недель.

Новорожденным группы «риска» целесообразно начинать применение лекарственного средства в родильном отделении с первых суток жизни до выписки по 1-2 дозы на прием 3 раза/сут.

При кишечных заболеваниях детям первого полугодия жизни лекарственное средство назначают по 3 дозы на прием 3 раза/сут. Детям второго полугодия и старше - по 5 доз 2 раза/сут.

При возникновении у детей нарушений функций ЖКТ и угрозы язвенно-некротического энтероколита назначают до 10 доз в сут.

При острых хронических воспалительных заболеваниях тонкого и толстого кишечника, колитах и энтероколитах у взрослых рекомендуется по 5 доз 2-3 раза/сут.

В комплексной терапии с антибиотиками и другими антибактериальными препаратами рекомендуется:

  • детям до 1 года по 5 доз 2-3 раза/сут, детям старше 1 года по 5 доз 3-4 раза/сут, взрослым по 10 доз 2-3 раза/сут.

Для интравагинального введения бифидумбактерин растворяют выше указанным способом. Полученной взвесью лекарственного средства пропитывают стерильный тампон, который вводят интравагинально и оставляют на 2-3 ч.

При воспалительных гинекологических заболеваниях и предродовой подготовке беременных группы «риска» бифидумбактерин назначают по 5-10 доз 1 раз/сут в течение 5-8 дней под контролем восстановления чистоты вагинального секрета до I-II степени и исчезновения клинических симптомов воспаления. При необходимости курс лечения бифидумбактерином можно повторить.

отзывы, инструкция по применению для детей при коликах, как разводить и давать Бифидумбактерин грудничку при поносе

Бифидумбактерин для новорожденных представляет собой лекарство, которое включает множество микроорганизмов, улучшающих функции органов пищеварения.

С помощью препарата удается восстановить микрофлору, улучшить обмен веществ, повысить неспецифическую резистентность детского организма. Данное средство помогает предотвратить размножение вредных микроорганизмов в кишечнике. Потому его нередко назначают в детском возрасте.

Формы выпуска и состав

Существует несколько форм выпуска данного лекарства:

  • Ампулы;
  • таблетки;
  • суппозитории;
  • пакетики-саше.

В каждой из лекарственных форм присутствует довольно много живых бактерий, которые помогают справиться с патогенной микрофлорой. В каждой ампуле присутствует питательная среда и около 107 живых и активных бифидобактерий, а порошок включает 108 бактерий, которые выделены из искусственно выращенной флоры.

На заметку. Иммобилизация Бифидумбактерина ускоряется, если принимать его в сочетании с активированным углем. Это помогает воздействовать на дрожжеподобные грибки, кишечную палочку и стафилококки.

Механизм действия

Данное лекарство направлено на оптимизацию кишечного баланса. Показанием к применению средства является ситуация, когда в организме не хватает полезных бактерий.

Инструкция по применению препарата БифидумбактеринБифидумбактерин для детей назначают для улучшения работы кишечника и восстановления его микрофлоры. Помимо этого, средство обладает иммуномодулирующими свойствами.

В составе лекарства присутствуют живые бифидобактерии. Когда ребенок находится в материнской утробе, его кишечник является стерильным. После рождения в орган заселяется микрофлора, похожая на материнскую. Давать Бифидумбактерин новорожденному рекомендуется для того, чтобы помочь развиться требуемому количеству полезных бактерий.

Нарушения функций кишечника ребенка связаны с дефицитом нужных микроорганизмов. За счет применения препарата удается добиться мягкого и естественного воздействия на детский организм. Потому прием средства допускается уже с первого дня жизни.

Показания

Перед тем как давать Бифидумбактерин грудничку, нужно ознакомиться с основными показаниями к применению лекарства. К ним относят следующее:

  1. Кишечный дисбактериоз. Препарат нужно давать при коликах, метеоризме, нарушении стула.
  2. Отдельные инфекционные патологии. Чаще всего применение средства требуется при заражении кишечника стафилококками, сальмонеллой, шигеллами. Бифидумбактерин отлично помогает от поноса, который сопровождает данные нарушения.
  3. Применение некоторых медикаментозных средств – в частности, антибиотиков. Такие препараты приводят к нарушению микрофлоры пищеварительных органов.
  4. Длительные запоры. Лекарство помогает справиться с нарушениями стула, которые присутствуют больше суток. Особенно часто такое средство выписывают детям, которые появились на свет раньше срока или в результате кесарева сечения.
  5. Пищевые отравления. Грудничкам нередко дают Бифидумбактерин после введения новых продуктов, от которых у них появляется диарея.

На заметку. Препарат нередко приходится назначать детям, которые питаются адаптированными смесями. В данном случае нарушения работы кишечника встречаются намного чаще, чем при грудном вскармливании.

Способ применения

Чтобы получить требуемый эффект, нужно знать, как разводить Бифидумбактерин. Как правило, дозировка препарата подбирается врачом. Однако перед началом использования непременно нужно изучить инструкцию по применению Бифидумбактерина для новорожденных.

На способ применения лекарства влияет форма выпуска:

  1. Светлый кал у детей: причины и возможные заболеванияЧаще всего новорожденным детям дают порошок. Сухое лекарство необходимо смешать с 50 мл смеси, грудного молока или кипяченой воды. Полученный раствор нужно сразу же давать ребенку. Как правило, малышам первого года жизни выписывают по 1 пакетику трижды в сутки. Применение Бифидумбактерина для грудничков можно осуществлять при помощи бутылочки, чистого шприца без иглы или чайной ложки.
  2. Иногда для лечения новорожденных малышей применяют средство в ампулах. Делать это нужно примерно так: сухое содержимое емкости следует смешать с молоком или кипяченой водой, после чего сразу дать ребенку. Схема применения обычно совпадает с особенностями использования средства в пакетиках: по 1 флакону трижды в день.
  3. Капсулы и таблетки новорожденным детям не выписывают, поскольку возникают сложности с их применением. Такие средства можно использовать только после 12 лет. В редких случаях допустимо применять таблетированные формы. Однако в этом случае средство нужно измельчить и смешать с жидкостью.

Неправильное разведение препарата может принести детскому организму серьезный вред. Потому так важно четко выполнять все врачебные рекомендации. Это поможет наладить стул ребенка, улучшить функции органов пищеварения, справиться с метеоризмом.

Отзывы свидетельствуют, что лекарство нужно в среднем принимать в течение 17-20 суток. Затем рекомендуется сделать перерыв. При необходимости терапию можно повторить.

Противопоказания

Если правильно использовать Бифидумбактерин при поносе у ребенка, лекарство не причинит здоровью вреда. Препарат не имеет противопоказаний или возрастных ограничений. Единственным исключением может стать аллергия на ингредиенты лекарства. Детям, которые имеют склонность к иммунным реакциям, препарат следует давать с осторожностью.

Побочные эффекты

Лекарство абсолютно безвредно и не приносит вреда организму малыша. Однако в отдельных ситуациях у ребенка может появиться аллергия на компоненты средства. К потенциально опасным составляющим относят лактозу и крахмал. Данные реакции чаще всего проявляются в виде высыпаний на коже, ринита, кашля. Также может появиться рвота или диарея.

Нарушения пищеварительного процесса могут наблюдаться и в случае неправильного приготовления раствора. Потому так важно соблюдать следующие рекомендации:

  1. Во время приема средства важно следить, чтобы ребенок не подавился. Потому необходимо подобрать подходящий метод введения лекарства. Стоит учитывать, что малыш не должен плакать или вертеться.
  2. Препарат нужно давать младенцу сразу после разведения. Категорически запрещено хранить готовый раствор в холодильнике. Это может принести серьезный вред детскому здоровью.
  3. После применения лекарства нужно контролировать общее состояние малыша. При появлении высыпаний на коже, нарушении дыхания, метеоризме, диарее или других признаках стоит немедленно обратиться к врачу.

Аналоги

В отдельных ситуациях требуется подобрать аналоги Бифидумбактерина для детей. Сегодня известно немало лекарств, которые обладают похожим принципом действия, что позволяет выбрать оптимальное средство.

Итак, основные аналоги препарата включают следующее:

Аналоги Бифидумбактерина: список эффективных лекарств
  • Бифиформ бэби;
  • Линекс;
  • Профибор;
  • Бификол;
  • Лактобактерин.

В составе данных препаратов присутствуют полезные бактерии, которые требуются для нормальной работы кишечника. Основное отличие кроется в дополнительных компонентах. Важно учитывать, что аналогичные лекарства имеют другие дозировки и схемы применения. Поэтому так важно получить консультацию педиатра.

Бифидумбактерин – эффективное лекарственное средство, которое позволяет восстановить кишечную микрофлору и улучшить состояние новорожденного малыша. Чтобы добиться желаемых результатов и избежать побочных реакций, важно четко следовать врачебным рекомендациям.

Если вам понравилась статья, предлагаем обсудить ее в отзывах!

Микробиом кишечника младенцев и пробиотики, которые работают

Осенью 2018 года группа исследователей из Института науки Вейцмана в Израиле опубликовала данные о том, что коктейль из 11 штаммов Lactobacillus и Bifidobacterium оказал минимальное немедленное воздействие и не оказывает длительного воздействия на состав кишечного микробиома мышей или людей. Фактически, пробиотические бактерии не были обнаружены ни у одного из четырнадцати взрослых участников после прекращения приема добавок.

Эти недавние открытия получили довольно много внимания прессы и усилили мнение общественности о том, что пробиотики - живые микроорганизмы, которые, как предполагается, приносят пользу человеческому хозяину, - не работают. Десятилетия исследований показали, что большинство пробиотиков не способны колонизировать кишечник человека и не оказывать ему длительного воздействия. Некоторые критики даже предположили, что пробиотики не могут быть многообещающим средством лечения болезней или иного улучшения здоровья и благополучия. Но мы подумали: «Не выбрасывайте ребенка вместе с водой из ванны - наша работа показывает, что правильный пробиотик может работать в кишечнике младенца.Результаты, опубликованные нами в 2017 году, показали, что кормление грудных детей пробиотиком, который включал в себя специфический штамм Bifidobacterium longum подвид infantis ( B. infantis EVC001), приводило к 10-миллионному увеличению среднего уровня фекальных B. Infantis . Этот уровень сохранялся в течение одного месяца после приема добавки и оставался повышенным в течение одного года после лечения.

Чтобы понять, почему микробиом кишечника младенца так сильно изменился за последнее столетие, мы попытались понять, как формируется микробиом кишечника младенца.

Колонизация кишечника младенца B. infantis имела защитные эффекты, такие как снижение уровней потенциальных кишечных патогенов и фекального эндотоксина, компонента внешней мембраны грамотрицательных организмов, вызывающих воспаление. Мы также обнаружили, что у младенцев, получавших пробиотик B. infantis , уменьшилось воспаление кишечника по сравнению с младенцами на грудном вскармливании, которые не получали пробиотик. Микробиомы кишечника младенцев, получавших B. infantis , содержали меньше генов устойчивости к антибиотикам - признак меньшего количества патогенов - и демонстрировали меньшую деградацию муцина, гликопротеина, секретируемого кишечным эпителием, который защищает эпителиальные клетки от прямого контакта с кишечными микробами.Эти данные подтверждают более ранние выводы Марка Андервуда и его коллег из Калифорнийского университета в Дэвисе. В 2013 году команда Андервуда показала, что кормление недоношенных детей другим штаммом, B. infantis ATCC15697, привело к большему увеличению фекальных Bifidobacterium и снижению уровней потенциальных патогенов по сравнению с младенцами, получавшими пробиотик, содержащий B. lactis .

В то время как научное сообщество и общественность сталкивались с неоднократными выводами о том, что пробиотические добавки, принимаемые взрослыми, не всегда эффективно колонизируют кишечник или приносят пользу, теперь у нас есть убедительные доказательства того, что микробиомы кишечника младенцев невероятно хорошо реагируют на определенные штаммы B. .Infantis . Вопрос был в том, почему.

Происхождение микробиома

Подсказки о микробиоме младенца можно найти в статьях столетней давности о комменсальных бактериях в кале младенцев. У. Р. Логан, клинический патолог из исследовательской лаборатории Королевского колледжа врачей в Эдинбурге, был первым, кто 100 лет назад сообщил, что бактерии в фекальных мазках младенцев, находящихся на грудном вскармливании, представляют собой почти монокультуру Bacillus bifidus , которая является сегодня известен как род Bifidobacterium . В отличие от этого, мазки фекалий младенцев, вскармливаемых искусственными смесями, в то время содержали множество бактерий, в том числе относительно небольшое количество Bifidobacterium , что больше похоже на микробное разнообразие, обнаруженное у младенцев, вскармливаемых грудью сегодня.

Эти поразительные изменения в составе микробиома кишечника, наблюдавшиеся за последнее столетие, согласуются с нашими недавними выводами о том, что pH кала у младенцев на грудном вскармливании резко увеличился с pH 5,0 до 6,5 за последние 100 лет, что связано с очевидной потерей из поколения в поколение Bifidobacterium и сопутствующее увеличение числа потенциальных патогенов.Снижение уровня Bifidobacterium в кишечном микробиоме младенцев, находящихся на грудном вскармливании, вероятно, является непреднамеренным последствием медицинской практики, которая может спасти жизни, но не поддерживает рост Bifidobacterium . Такая медицинская практика включает лечение антибиотиками, к которым чувствительны Bifidobacterium ; детская смесь, не содержащая того питания, которое требуется бактериям; и большее количество родов путем кесарева сечения, которые обходят путь, по которому бактерия передается от матери к ребенку.Эти медицинские практики связаны с повышенным риском аллергических и аутоиммунных заболеваний, распространенных в странах, богатых природными ресурсами. Предполагается, что снижение уровня Bifidobacterium и увеличение количества провоспалительных микробов в раннем младенчестве происходит во время критического периода развития иммунной системы и, таким образом, может повышать риск иммунных заболеваний в более позднем возрасте.

Чтобы понять, почему микробиом кишечника младенца так сильно изменился за последнее столетие, мы попытались понять, как формируется это сообщество.Колонизация кишечного микробиома младенца начинается при родах с контакта с материнскими микробами - в основном вагинальными и фекальными микробами у младенцев, рожденных естественным путем, или преимущественно микробами из кожи, рта и окружающей среды у младенцев, рожденных путем кесарева сечения. После рождения младенцы подвергаются бомбардировке огромным количеством микробов, встречающихся в окружающей среде, в том числе в грудном молоке, но виды, которые становятся прочными членами микробного сообщества, часто передаются матерями младенцев через физический контакт.

Дети продолжают приобретать виды кишечного микробиома от своих матерей и других членов общества в раннем возрасте. Это контрастирует с микробиомом кишечника взрослого человека, который стабилен и сопротивляется изменениям в значительной степени потому, что доступное пространство и пища уже используются установленными микробами - экологические ниши просто заняты в кишечнике взрослого человека. Таким образом, логично, что пробиотик имеет больше шансов сохраниться в кишечнике младенца, где он сталкивается с меньшей конкуренцией, и, следовательно, с большей вероятностью будет иметь пищу, которую он может потреблять, и место, где он может расти.Пробиотик служит для младенца еще одним источником контакта с новыми бактериями.

Осознавая это, мы начали задаваться вопросом: в наших исследованиях, какую экологическую нишу занял B. infantis , который поддерживал его устойчивость у младенцев еще долгое время после прекращения приема пробиотиков?

Изменяющийся микробиом младенца

Исторически микробиом кишечника грудного ребенка представлял собой почти монокультуру Bifidobacterium ( J Pathol Bacteriol , 18: 527–51, 1913).Микробиом кишечника младенцев на искусственном вскармливании был намного разнообразнее. Микробиом кишечника детей, вскармливаемых грудью, и микробиом кишечника детей, вскармливаемых искусственными смесями, теперь более похожи на исторический микробиом кишечника детей, вскармливаемых грудным молоком, хотя современные дети, вскармливаемые грудью, имеют больше Bifidobacterium , чем современные дети, вскармливаемые молочными смесями.

См. Полную инфографику: WEB | PDF

Подготовка к работе

Основным фактором, определяющим, какие бактерии процветают в кишечнике, является доступность их углеводных источников пищи. Таким образом, чтобы пробиотик работал у младенца, микроорганизмы должны быть выбраны таким образом, чтобы источник пищи, который они использовали, наиболее эффективно соответствовал доступному - пища, которая присутствует и еще не потребляется другими бактериями. Мы решили определить, какие углеводы B. infantis потребляет в кишечнике младенца.

Естественно, мы обратились к грудному молоку, которое на протяжении миллионов лет было единственным продуктом питания, способным исключительно питать и защищать младенцев в течение первых шести месяцев жизни.Грудное молоко содержит питательные вещества, а также непитательные биоактивные молекулы, включая углеводы, известные как олигосахариды грудного молока (HMOs). Еще в середине 1900-х годов Пауль Дьёрдь, всемирно известный биохимик, диетолог и педиатр из больницы Пенсильванского университета, и его коллеги по незнанию ссылались на больничные кассы, когда они предполагали существование «бифидного фактора», чего-то уникального в мире. грудное молоко, которым кормили Bifidobacterium . Хотя люди не могут переваривать ОПЗ, оказывается, что Bifidobacterium , особенно B.Infantis , кан. В 2007 году наша группа в Калифорнийском университете в Дэвисе использовала инструменты на основе масс-спектрометрии в сочетании с микробиологией, чтобы показать, что B. infantis поглощает HMO в качестве единственного источника энергии, в то время как другие виды Bifidobacterium потребляют только некоторые HMO в дополнение к растениям. , углеводы животного и хозяйского происхождения.

HMO - это разнообразный класс сложных углеводных молекул, синтезируемых молочной железой. Имея приблизительно 200 различных молекулярных видов, они представляют собой третий по распространенности твердый компонент в грудном молоке после лактозы и жира.Поскольку ОПЗ сложны и различаются по структуре, их производство дорого. Современные смеси для младенцев могут содержать одну или две простые структуры HMO, но в меньшей концентрации, чем в грудном молоке. Детским смесям не хватает изобилия и сложности ОПЗ для выборочного кормления полезных кишечных микробов, а также для связывания и нейтрализации патогенных микроорганизмов из кишечника.

Виды бактерий в кишечнике младенца, способные потреблять HMO, можно рассматривать как ориентированный на молоко микробиом (MOM).Хотя B. infantis , по-видимому, является наиболее эффективным потребителем ОПЗ, другие виды Bifidobacterium , в частности B. breve и B. bifidum , могут потреблять и потребляют некоторые ОПЗ, но также потребляют растения, углеводы животного и хозяйского происхождения. Виды Bifidobacterium , которые колонизируют кишечник, изменяются на протяжении всей жизни в ответ на доступные углеводы в рационе хозяина. Например, B. infantis , B. breve и B.bifidum - это бифидобактерии MOM, которые обычно обнаруживаются в стуле детей, находящихся на исключительно грудном вскармливании, а B. longum и B. adolescentis , которые преимущественно потребляют углеводы растительного и животного происхождения, обычно обнаруживаются в стуле взрослых. Тем не менее, существуют различия и совпадения между видами, присутствующими на разных этапах жизни.

Основным фактором, определяющим, какие бактерии процветают в кишечнике, является доступность их углеводного источника пищи.

Из бифидобактерий MOM, обнаруженных в микробиоме кишечника младенца, разные виды могут иметь разное значение для микробиома.Например, когда мы давали младенцам исключительно грудного вскармливания добавку с пробиотиком B. infantis EVC001, в их кишечнике преобладали представители рода Bifidobacterium - относительная численность кишечного микробиома составляла более 80 процентов, а количество потенциальных патогенов составляло менее 10 процентов сообщества. С другой стороны, микробиомы кишечника младенцев, вскармливаемых исключительно грудью, которым не вводили B. infantis EVC001, имели гораздо более низкие уровни Bifidobacterium , с относительной численностью около 30 процентов, а потенциальные патогены составляли около 40 процентов микробов. в их интуиции, результаты, которые согласуются с предыдущей работой нашей группы и других.Эта почти монокультура Bifidobacterium , по-видимому, вызывалась B. infantis , что составляло около 90 процентов от общего количества Bifidobacterium у младенцев, получавших пробиотик. Напротив, B. longum были преобладающими Bifidobacterium кишечника в контрольной группе, за которыми следовали B. brev e и B. bifidum . Эти данные подчеркивают жизненно важное значение штаммовой специфичности пробиотиков и сочетание присутствия B.Infantis и грудное вскармливание для поддержания защитной среды кишечника у младенцев.

Чтобы понять, как дополнительный B. infantis может так успешно победить другие микробы в кишечнике младенца, мы глубоко погрузились в его стратегию кормления. Оказывается, он разборчив в еде, питается исключительно в ОПЗ, а когда ОПЗ в изобилии, B. infantis жадно их пожирает. В отличие от других бифидобактерий MOM, B. infantis обладает всеми генами, необходимыми для полной внутренней деградации HMO, и предпочтительно использует HMO по сравнению с любым другим источником углеводов.Другие бифидобактерии MOM, такие как штаммы B. bifidum и B. breve , обладают способностью к росту только с подмножеством ОПЗ. B. infantis , таким образом, имеет конкурентное преимущество, когда грудное молоко составляет весь рацион.

Исследование 2008 года, проведенное коллегами из Калифорнийского университета в Дэвисе и их соавторами, показало, как B. infantis быстро использует HMO: со связывающими белками для захвата HMO из просвета кишечника и переносчиками, которые направляют их в цитоплазму, расщепляя их на моносахариды. которые затем ферментируются в лактат и ацетат короткоцепочечных жирных кислот, которые секретируются из клетки.Эти конечные продукты поддерживают более низкий pH в кишечной среде, поддерживая транспорт этих соединений в эпителий кишечника для использования хозяином и создавая нежелательную среду для потенциальных патогенов. Производство ацетата также блокирует проникновение токсичных молекул, продуцируемых патогенными бактериями, за счет усиления барьерной функции кишечника и ингибирования провоспалительных и апоптотических реакций. Недавние результаты одного исследования in vitro показали, что количество ацетата и лактата, продуцируемого различными видами бифидобактерий, зависит от того, насколько хорошо они потребляют доступные им углеводы.Следовательно, если кормить потребляющим углеводы микробом его предпочтительным углеводом, у него будет больший потенциал для производства большего количества своих защитных конечных продуктов.

Другая причина, по которой B. infantis превосходит другие штаммы бифидобактерий в кишечнике младенцев, вскармливаемых грудью, заключается в том, что все процессы переваривания HMO происходят внутри бактериальной клетки. B. bifidum , с другой стороны, переваривает ОПЗ извне. Это внеклеточное пищеварение высвобождает простые углеводы и может обеспечивать перекрестное питание других видов Bifidobacterium , но также и перекрестное питание и, таким образом, открывает экологическую нишу для других, возможно, менее полезных микробов.Перекрестное кормление микробами разнообразит микробиом кишечника, что в целом считается полезным для взрослых.

Но есть ли преимущество в наличии почти монокультуры Bifidobacterium у младенцев? Задав этот вопрос, мы сосредоточились на развитии иммунной системы.

Молоко-ориентированный микробиом

Олигосахариды грудного молока (HMOs) представляют собой сложные углеводы, которые микробные виды молочно-ориентированного микробиома (MOM) могут использовать в качестве источника пищи. Bifidobacterium infantis кодирует множество белков, которые специфически связывают и транспортируют все типы HMO в ее клетку и переваривают их внутри. Другие виды Bifidobacterium переваривают только некоторые ОПЗ, а некоторые делают это извне. Переваривание HMO с помощью MOM Bifidobacterium приводит к выработке лактата и ацетата короткоцепочечных жирных кислот, которые секретируются в просвет кишечника. Эти молекулы снижают pH в кишечной среде, что улучшает их транспорт в эпителий для использования хозяином и создает нежелательную среду для потенциальных патогенов, таких как E.coli .

© laurie o’keefe

© laurie o’keefe

B. infantis предпочтительно потребляет все виды ОПЗ по сравнению с любыми другими источниками углеводов.

  1. Связывающие белки связываются с HMO и направляют углеводы к транспортерам, которые перемещают их в бактериальную клетку.
  2. Внутриклеточные гликозилгидролазы расщепляют каждую гликозидную связь
    всех структур HMO, давая моносахариды.
  3. Эти моносахариды метаболизируются в ацетат и лактат, которые секретируются из клетки.

© laurie o’keefe

B. bifidum питается только частью ОПЗ.

  1. Гликозилгидролазы, прикрепленные к внешней клеточной мембране, расщепляют
    HMO на моно- и дисахариды во внеклеточном пространстве.
  2. Эти молекулы импортируются через транспортеры, а некоторые из них поглощаются другими кишечными микробами. Этот процесс называется перекрестным кормлением.
  3. Моно- и дисахариды далее метаболизируются в ацетат и лактат, хотя, поскольку B. bifidum является менее эффективным потребителем ОПЗ, он, вероятно, производит меньше этих продуктов, чем B. infantis.
Полная инфографика: WEB | PDF

Преимущества

Bifidobacterium

Снижение уровня Bifidobacterium в микробиомах кишечника младенцев и связанное с этим нарушение регуляции микробного сообщества с большим количеством потенциальных патогенов было предложено как один из возможных факторов увеличения частоты аутоиммунных заболеваний, которые чума жителей богатых ресурсами стран. И наоборот, обсервационные исследования показали положительные иммунные эффекты наличия в фекальном микробиоме доминирования Bifidobacterium . В двух исследованиях с участием младенцев и детей раннего возраста из Бангладеш, численность кала B. infantis и Bifidobacterium в возрасте двух месяцев сильно коррелировала с улучшенными ответами на вакцины в возрасте шести месяцев и двух лет по сравнению с младенцами, не колонизированными B. или с низкой относительной численностью Bifidobacterium .

Кроме того, бифидобактерии с меньшей вероятностью, чем другие микробы, особенно потенциальные патогены, несут и разделяют гены устойчивости к противомикробным препаратам, что может привести к более высокому риску устойчивых к антибиотикам инфекций. В обсервационном исследовании младенцев из Бангладеш и Швеции преобладание кишечной Bifidobacterium было связано со значительным сокращением как количества, так и распространенности генов устойчивости к антибиотикам. Более того, по сравнению с младенцами из контрольной группы, вскармливаемыми грудью, добавка B.Infantis EVC001 привел к снижению генов устойчивости к антибиотикам на 90 процентов, что в значительной степени обусловлено снижением уровней Escherichia , Clostridium и Staphylococcus - потенциально патогенных бактерий, которые играют важную роль в эволюции и эволюции. распространение генов устойчивости к антибиотикам.

В попытке восстановить микробиом кишечника младенцев с преобладанием Bifidobacterium , который был типичным для детей, вскармливаемых грудью 100 лет назад, мы решили провести рандомизированное контролируемое исследование с использованием B.Infantis EVC001 пробиотик. Учитывая, что не все штаммов B. infantis эффективно потребляют все ОПЗ, мы выбрали B. infantis EVC001, потому что мы знали, что этот штамм имеет полную кассету генов, необходимую для полного переваривания всех ОПЗ. Здоровые доношенные младенцы, находящиеся на грудном вскармливании, были рандомизированы для употребления B. infantis EVC001 в течение 21 дня подряд, начиная с 7-го дня после рождения, или для отказа от пробиотика.

ПРОБИОТИК, КОТОРЫЙ УДАР: полученные с помощью сканирующего электронного микроскопа микрофотографии образцов кала младенцев показывают значительное увеличение количества микробов Bifidobacterium у тех, кто получал пробиотик под названием EVC001 (справа), по сравнению с контрольной группой (слева).

По сравнению с контрольными младенцами, находившимися на грудном вскармливании, которые не получали пробиотик, добавление приводило к увеличению в 10 000 000 раз в среднем уровней фекальных B. infantis и к увеличению фекальных Bifidobacterium на 79 процентов в течение периода приема добавок, и это все еще сохранялось. верно через месяц после приема добавок. Это означает, что колонизация Bifidobacterium продолжалась без продолжения приема пробиотиков. Кроме того, колонизация B.infantis сохранялся до одного года, если младенцы продолжали потреблять грудное молоко и не подвергались воздействию антибиотиков. Важно отметить, что у младенцев, получавших добавки, наблюдалось 80-процентное снижение количества потенциальных кишечных патогенов, принадлежащих к семействам Enterobacteriaceae и Clostridiaceae , а также снижение содержания эндотоксина в фекалиях. Кроме того, мы наблюдали 2-кратное увеличение содержания лактата и ацетата в кале и 10-кратное снижение pH кала. Микробиомы и биохимия кишечника младенцев с добавками напоминают нормы, соблюдаемые столетие назад.

Мы также нашли некоторые подсказки о последствиях «модернизации» микробиома кишечника. Младенцы, находящиеся на грудном вскармливании с низким уровнем фекалий Bifidobacterium , выделяли со стулом в 10 раз больше ОПЗ в течение двухмесячного периода исследования, чем младенцы, получавшие добавку B. infantis EVC001, что указывает на то, что ОПЗ - третий по численности компонент грудного молока - были будет тратить впустую. Мы также обнаружили, что младенцы с низким содержанием фекальных Bifidobacterium имели в несколько раз более высокие уровни провоспалительных цитокинов в фекалиях
по сравнению с младенцами, в кишечных микробиомах которых преобладали Bifidobacterium после приема B.Infantis EVC001.

Взятые вместе, эти данные демонстрируют, что этот конкретный штамм B. infanti s, предоставленный в качестве пробиотика младенцам, находящимся на грудном вскармливании, резко колонизировал микробиом кишечника младенца во время и после приема добавок и благотворно реконструировал микробную, биохимическую и иммунологическую среду. в кишечнике младенца. Многие младенцы во всем мире никогда не получают B. infantis , но сочетание грудного вскармливания и приема пробиотиков с этой бактерией, по-видимому, приводит к питательной и защитной среде кишечника.

Многие младенцы во всем мире никогда не получают B. infantis , но сочетание кормления грудью и приема пробиотиков с этой бактерией, по-видимому, приводит к созданию питательной и защитной среды кишечника.

Наши результаты также подтверждают гипотезу о том, что неэффективность некоторых пробиотиков у взрослых отчасти связана с тем, что они вводят новый вид в устоявшееся сообщество с небольшим количеством открытых экологических ниш. Пробиотики могут не работать у младенцев, когда существует несоответствие между потребностью в пробиотике в углеводах и наличием высокоспецифичных углеводов, таких как HMO, в грудном молоке.Поскольку B. infantis эффективно потребляет почти все ОПЗ, обнаруженные в грудном молоке, он, вероятно, найдет открытую экологическую нишу, а затем вытеснит другие микробы, особенно провоспалительные патогены.

Многие ученые работают над тем, чтобы понять, что на самом деле означает микробиом кишечника младенцев для здоровья на протяжении всей жизни. Между тем, мы обращаем наше внимание на другие вопросы: Чем отличаются модели колонизации Bifidobacterium в младенческих популяциях по всему миру от младенчества до отъема от груди? И какие твердые продукты поддерживают здоровье кишечника и иммунной системы? Работая при финансовой поддержке Национального института здоровья, мы сейчас проводим исследование, призванное понять, как углеводные структуры прикорма влияют на микробную функцию, которая будет поддерживать здоровый микробиом кишечника и развитие иммунной системы в позднем младенчестве и раннем детстве.Конечная цель - определить конкретные углеводные структуры в рационе, которые выборочно питают полезные кишечные микробы у детей в критический период иммунного развития для здоровья на протяжении всей жизни.

Дженнифер Смиловиц - заместитель директора программы исследований человека в Институте пищевых продуктов для здоровья и научный сотрудник Департамента пищевых наук и технологий Калифорнийского университета в Дэвисе. Диана Хазард Тафт - научный сотрудник лаборатории Дэвида Миллса в Департаменте пищевых наук и технологий и член Института продуктов питания для здоровья в Калифорнийском университете в Дэвисе.

Штаммы бифидобактерий в кишечнике новорожденных происходят от их матерей

Biosci Microbiota Food Health. 2018; 37 (4): 79–85.

Hiroshi MAKINO

1 Yakult Central Institute, 5-11 Izumi, Kunitachi-shi, Tokyo 186-8650, Japan

1 Yakult Central Institute, 5-11 Izumi, Kunitachi-shi, Tokyo 186-8650 , Япония

Поступила 17 мая 2018 г .; Принято 28 июля 2018 г.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

Считается, что желудочно-кишечный тракт быстро заселяется бактериями сразу после рождения. Источник этих кишечных микробов представляет постоянный интерес, потому что все больше данных свидетельствует о том, что состав начальной кишечной бактериальной колонизации сильно влияет на здоровье. В частности, источник бифидобактерий получил заметную внимание, потому что предполагается, что эти бактерии играют решающую роль в защите от восприимчивости к различным заболеваниям в более позднем возрасте.Однако источник этих микробов осталось неясным. Недавно было подтверждено, что матери передают свои уникальные штаммы бифидобактерий своим детям вскоре после рождения. Передаваемые штаммы преобладают во время в раннем младенчестве, что позволяет предположить, что кишечные бифидобактерии матери являются важным источником микробиоты кишечника младенца. Соответственно, поддержание здоровой, сбалансированной микробиоты кишечника во время беременность оказывает важное положительное влияние на микробиоту кишечника новорожденного.

Ключевые слова: бифидобактерии, грудное молоко, младенчество, кишечная микробиота, передача от матери ребенку

ВВЕДЕНИЕ

Кишечная микробиота представляет собой сложную экосистему с обширной метаболической активностью; он включает более 1000 видов бактерий и составляет от 10 11 до 10 12 бактериальных клеток на грамм кала [1, 2].Считается, что эти виды бактерий играют роль в развитии их хозяина. состояния здоровья и болезней путем защиты от патогенов, обработки питательных веществ, регулирования накопления жира и стимуляции ангиогенеза [3,4,5,6]. Считается, что состав кишечной микробиоты взрослого человека стабильна в течение длительного периода, хотя может заметно различаться у разных людей [7]. Напротив, желудочно-кишечный тракт у младенцев быстро колонизируется. с бактериями сразу после рождения [8,9,10]; состав кишечная микробиота сравнительно проста во время грудного вскармливания, становится сложной после начала отлучения и остается стабильной в пожилом возрасте [11].Накапливающиеся данные свидетельствуют о том, что начальная колонизация кишечника обеспечивает мощный микробный стимул, который приводит к глубоким изменениям в развитии иммунитета кишечника и слизистых оболочек. система [12, 13]. Следовательно, считается, что микробная колонизация в младенчестве имеет важное значение на протяжении всей жизни. хорошее здоровье.

Бифидобактерии - одни из самых важных и полезных бактерий в кишечнике не только для взрослых, но и для младенцев. Как правило, бифидобактерии становятся преобладающими микроорганизмами. в кишечнике в течение недели после рождения, и они остаются доминирующими до отнятия от груди [11].Более того, бифидобактерии, по-видимому, играют решающую роль в защищая хозяина от патогенных бактерий, помогая активизировать иммунную систему слизистых оболочек и, следовательно, защищая от предрасположенности к различным заболеваниям в более позднем возрасте [14].

Об источнике этих кишечных бактерий имеется мало информации. Виды Bifidobacterium классифицируются как типичные анаэробные бактерии [15], и было высказано предположение, что кишечные микробы младенца приобретаются во время прохождения через родовые пути [16].В нескольких исследованиях сообщалось об выделении видов Bifidobacterium , в том числе B. adolescentis , B. bifidum , B. breve , B. catenulatum и B. longum - из вагинальных мазков [17, 18]. Однако мало известно о ростовой среде в родовых путях беременных и составе микробиоты влагалища. Таким образом, происхождение этих кишечных микробов продолжает вызывать опасения. внимание.

Несколько недавних исследований с использованием анализа на уровне штаммов подтвердили, что матери передают свои уникальные штаммы бифидобактерий своим младенцам вскоре после рождения [19,20,21].В этом обзоре я суммирую те исследования, в которых изучались взаимосвязи между кишечной микробиотой матери, кишечной микробиотой младенца и грудным молоком человека.

МАТЕРИНСКИЕ КИШЕЧНЫЕ БИФИДОБАКТЕРИИ И КИШЕЧНЫЕ БИФИДОБАКТЕРИИ МЛАДЕНЦА

Несколько исследований с использованием молекулярно-биологических методов подтвердили возможность передачи кишечной микробиоты от матери к младенцу [18, 22,23,24,25]. В молекулярные методы, используемые в этих исследованиях, такие как количественная ПЦР в реальном времени (КПЦР), эффективны для идентификации микроорганизмов на уровне видов, но не позволяют проводить сравнения на штамме. уровень.Более того, анализы случайно амплифицированной полиморфной ДНК (RAPD) и гель-электрофореза в импульсном поле (PFGE) были подвергнуты сомнению как высокочувствительные методы типирования на уровне штаммов из-за факторы в их базовых конструкциях, которые потенциально могут создавать паразитные полосы [26, 27]. Следовательно, далее, более требуются высокочувствительные анализы, чтобы подтвердить, что, когда и как бактерии передаются от матери или из любых других источников окружающей среды к младенцу.

Макино и др. исследовали взаимосвязь между материнскими кишечными бифидобактериями и младенческими кишечными бифидобактериями с помощью мультилокусного последовательного типирования (MLST) [19, 20].MLST использует полиморфизмы последовательностей набора из семи генов в геноме для генерации данных, которые можно использовать для различать бактериальные штаммы [28]. Этот метод дает воспроизводимые данные с высоким разрешением и, следовательно, подходит для обоих видов. идентификация и типирование штаммов [29].

Штаммы бифидобактерий были выделены из образцов фекалий, взятых у 17 здоровых пар мать-младенец (вагинальные роды, 12 пар; кесарево сечение, 5 пар), проживающих в Антверпене. (Бельгия) [20].Образцы кала брали у матерей дважды (с интервалом не менее 1 недели) до родов и у младенцев в 0 (меконий), 3, 7, 30, и 90-дневного возраста. Штаммы бифидобактерий были выделены из этих образцов и классифицированы с помощью MLST. Всего было получено 273 изолята бифидобактерий и пять Bifidobacterium вида ( B. adolescentis , B. bifidum , B. catenulatum , B. longum подвида longum и B.pseudocatenulatum ) оказались монофилетическими между отдельными парами мать и ребенок. Эти данные подтвердили, что от матери к ребенку происходит передача нескольких видов Bifidobacterium . Монофилетические штаммы от матери к младенцу постоянно выявлялись в образцах фекалий младенцев (). Эти результаты свидетельствуют о том, что преобладающие штаммы в кишечнике беременных женщин были перенесены в кишечник их младенцев, и их количество вскоре увеличилось. рождения, а впоследствии колонизировали младенцев.Эти результаты подтвердили первоначальные исследования, которые предполагали важность передачи бактерий от матери ребенку в колонизации желудочно-кишечный тракт новорожденных [22,23,24,25]. Более того, в нескольких семьях два штамма от разных видов были монофилетическими, что подтверждает, что передача от матери ребенку нескольких Bifidobacterium видов могут встречаться параллельно в пределах одного семейства. Эти результаты также предполагают, что другие виды комменсальных бактерий также могут передаваться через мать и колонизируют кишечник младенца вскоре после рождения.

Дендрограмма 25 особей B . bifidum штаммов (BIF) (по данным исследования Макино и др. [21]). * Изоляты от обоих членов пары мать-младенец имели одинаковый тип последовательности и кластер. Отметим, что мать № 76 родила двойню (А, Б). Оригинал публикация доступна по адресу https://doi.org/10.1371/journal.pone.0078331.

Монофилетические штаммы матери и ребенка Bifidobacterium были получены от 11 из 12 младенцев, рожденных естественным путем ().Следует отметить, что монофилетические штаммы Bifidobacterium не наблюдались среди пяти младенцев, рожденных с помощью кесарева сечения, что свидетельствует о передаче инфекции от матери ребенку. эти штаммы встречались только среди младенцев, рожденных естественным путем. Эти результаты предполагают, что способ родоразрешения может влиять на частоту передачи инфекции от матери ребенку.

Таблица 1.

Обнаружение монофилетических штаммов Bifidobacterium мать – младенец среди 17 пар мать – младенец (по данным исследования Makino et al. [21])

Количество бифидобактерий видов монофилетического штамма анализировали с помощью кПЦР. Среди младенцев, рожденных естественным путем, количество видов монофилетических штаммов матери и ребенка в кишечнике увеличивалось. в количестве, чтобы стать преобладающим штаммом Bifidobacterium в течение 3 дней после рождения. Напротив, среди младенцев, рожденных посредством кесарева сечения, общее количество бифидобактерий оставались значительно ниже, чем у новорожденных, рожденных естественным путем, до 7-дневного возраста. Это открытие предлагает подтверждающее свидетельство того, что колонизация кишечника бифидобактериями начинается. раньше среди младенцев, родившихся через естественные родовые пути, чем среди младенцев, рожденных с помощью кесарева сечения [30].Среди младенцев, рожденных естественным путем, увеличение числа бифидобактерии в течение нескольких дней после рождения могут быть связаны с передачей инфекции от матери ребенку. Более того, учитывая, что монофилетические штаммы мать – младенец не наблюдались в у младенцев, рожденных посредством кесарева сечения, материнские штаммы, вероятно, передавались во время транзита через родовые пути.

Интересно, что не все монофилетические штаммы матери и ребенка Bifidobacterium были изолированы на протяжении всего периода отбора проб.Монофилетический B. bifidum и B. longum subsp. longum штаммов были выделены из образцов фекалий младенцев в течение 90 дней после рождения. Подсчет бактерий показал, что это были преобладающий вид Bifidobacterium от 3 до 90 дней после рождения (). Напротив, монофилетические штаммы, принадлежащие B. adolescentis и B. catenulatum , не были обнаружены в образцах фекалий младенцев после 7-дневного возраста.Более того, хотя несколько младенцев, рожденных через естественные родовые пути, содержали эти виды в концентрациях до 10 10 клеток / г фекалий, эти виды не были доминирующими в кишечнике. естественных родов в раннем младенчестве. Эти результаты позволяют предположить, что некоторые виды бифидобактерий преимущественно размножаются и колонизируют кишечник доставляемых через естественные родовые пути. младенцы.

Подсчет каждого вида Bifidobacterium в кале младенцев в возрасте от 0 до 90 дней (по данным исследования Makino et al. [21]).

* B . Группа catenulatum включает виды B . catenulatum и B . pseudocatenulatum . Оригинальная публикация доступна по адресу https://doi.org/10.1371/journal.pone.0078331.

Все дети в исследовании находились на исключительно грудном вскармливании в течение как минимум 2 месяцев. Широко известно, что грудное молоко содержит множество сложных олигосахаридов (HMO), которые избирательно стимулируют рост конкретных видов бифидобактерий [31, 32].Типичные виды детенышей, такие как B. bifidum и B. longum эффективно использует ОПЗ [33,34,35], тогда как бифидобактерии взрослого типа, такие как B. adolescentis , менее эффективны в использовании ОПЗ [34, 35]. Таким образом, грудное вскармливание и наличие ОПЗ могут быть ключевыми факторами, объясняющими, почему, несмотря на то, что младенцы приобретают широкий спектр видов бифидобактерий из своих Матери, виды, способные использовать ОПЗ, остаются одними из основных колонизаторов кишечника младенцев.

Несколько исследований показали, что факторы окружающей среды, такие как присутствие медицинского персонала или других младенцев, также могут влиять на состав кишечной микробиоты [36,37,38]. Используя профилирование плазмид, Murono et al. обнаружил, что Госпитальные штаммы Escherichia coli передавались горизонтально среди младенцев [38]. С другой стороны, Makino et al. показали, что ни один из штаммов монофилетических бифидобактерий не был идентифицирован у других младенцев, родившихся в той же больнице, и они не нашли доказательств возникновения горизонтального передача бифидобактерий [20].Более того, образовались монофилетические штаммы матери и ребенка всех пяти из видов Bifidobacterium . отдельные кластеры для каждой семьи, предполагая, что в каждой семье была своя собственная уникальная группа бифидобактерий, которая передавалась от матери к младенцу. Эта концепция вертикального переноса подкрепляется тем фактом, что штаммов Bifidobacterium от матери, родившей близнецов, были идентифицированы в кишечнике обоих младенцев (), что позволяет предположить, что генетический фон хозяина также может быть ключевым фактором, влияющим на состав кишечной микробиоты.Это согласуется с результаты предыдущих исследований, в которых сообщается, что каждая семья имеет свой собственный набор из видов Lactobacillus и Bifidobacterium [39, 40]. Взятые вместе, эти результаты показывают, что способ доставки и штаммы кишечных бифидобактерий матери являются ключевыми. детерминанты детской бифидобактериальной микробиоты в раннем младенчестве.

КИШЕЧНИКОВЫЕ БИФИДОБАКТЕРИИ И БИФИДОБАКТЕРИИ МЛАДЕНЦА В МОЛОКЕ ГРУДКИ

Было высказано предположение, что бактерии из кишечника матери человека попадают в молоко через так называемый энтеро-молочный путь и тем самым влияют на колонизацию кишечника младенца [41, 42] .Предыдущие исследования показали, что штаммы B. breve и B. longum subsp. longum , обнаруженные в кале младенцев, идентичны штаммам, обнаруженным в молоке их матери [19, 43, 44]. Эти исследования выдвинули гипотезу о вертикальной передаче штаммов B. breve из материнского молока в младенец, потому что B . breve Было обнаружено, что штаммов являются монофилетическими между грудным молоком и кишечником младенца в одних и тех же парах мать-младенец [43, 44].Однако, учитывая, что подробные данные временных рядов изолятов (включая периоды изоляции) не были опубликованные в этих исследованиях, остается вопрос, присутствовали ли эти общие бифидобактерии временно или они колонизировали кишечник младенца.

Макино и др. исследовал, сохраняется ли совместное использование штаммов бифидобактерий между материнским молоком и кишечником младенца в период грудного вскармливания [21]. В их исследовании 283 штамма бифидобактерий были выделены из материнского грудного молока и младенческих фекалий, собранных в различные моменты времени у 102 здоровых пары мать – младенец (для грудного молока, один раз перед родами, во время родов [молозиво] и через 7 и 30 дней после родов; для младенческих фекалий, при рождении [меконий] и в возрасте 7 и 30 дней).Изоляты идентифицировали секвенированием гена 16S рРНК и классифицировали с помощью MLST. Штаммы бифидобактерий были получены из грудного молока, собранного через 7 и 30 дней после родов, и в в соответствии с предыдущими исследованиями [45, 46], наиболее часто выделяемые виды Bifidobacterium были Б. breve . Напротив, бифидобактерии не были выделены ни из каких образцов грудного молока, взятых перед родами, или из молозива. С другой стороны, изоляция от младенца кал подтверждался иногда еще в день рождения (меконий).

Интересно, что штаммы, принадлежащие к детским бифидобактериям, таким как B. breve , B. longum subsp. longum и B. bifidum виды были единственными видами, которые были идентифицированы как монофилетические между фекалиями младенцев и материнским молоком. Эти штаммы постоянно обнаруживались в материнском молоке и кале младенца на протяжении всего периода период грудного вскармливания, подтверждая, что они устойчиво распределялись между материнским молоком и кишечником младенца.Более того, монофилетические штаммы были выделены из детских фекалий в моменты времени такие же, как или раньше, когда они были выделены из грудного молока; ни один из них не был выделен из грудного молока раньше, чем из младенческих фекалий (). Таким образом, эти результаты не подтверждают данные предыдущих отчетов, в которых предполагалось, что бифидобактерии передаются с грудным молоком в кишечник младенца [41, 42, 45, 46]. Фактически, результаты исследования Макино и др. предполагают, что штаммы бифидобактерий передаются от младенца к грудному молоку во время грудного вскармливания, учитывая, что инфракрасная фотография показала высокий степень ретроградного притока обратно в молочные протоки во время сосания [47].Вероятность передачи штамма от грудного молока в грудное молоко была значительно выше, чем от грудного молока к младенцу [21].

Таблица 2.

Сроки выделения каждого монофилетического штамма Bifidobacterium из материнского грудного молока и детских фекалий (по данным исследования Makino et al. al. [22])

Из-за ограничений методологии, использованной Makino et al. (т. Е. Неотъемлемая систематическая ошибка, возникающая из-за используемых методов культивирования), остается неясным, является ли грудное молоко является первым источником микробов для младенцев.Однако результаты подтверждают, что грудное молоко является резервуаром бифидобактерий и что определенные штаммы являются общими для кишечника младенца и грудное молоко при грудном вскармливании.

ЗАКЛЮЧИТЕЛЬНЫЕ ЗАМЕЧАНИЯ И ПЕРСПЕКТИВЫ

Недавние исследования подтвердили, что матери, рожающие естественным путем, передают свои уникальные семейные штаммы бактерий в кишечник своих младенцев в раннем младенчестве. Эти данные свидетельствуют о том, что способ родоразрешения и штаммы кишечных бифидобактерий матери являются ключевыми факторами в определении бифидобактериальной микробиоты младенца в раннем младенчестве.Обслуживание здоровой, сбалансированной микробиоты кишечника во время беременности является важным фактором, который положительно влияет на микробиоту кишечника новорожденного. Такие факторы, как питание у младенцев, могут влияют на сохраняемость семейно-специфических штаммов бифидобактерий у младенцев. Дальнейшие передовые исследования на уровне штаммов прояснят, как передача от матери ребенку влияет на другие компоненты кишечной микробиоты в младенчестве и, следовательно, важность материнского кишечника, родовых путей и молока в колонизации кишечника новорожденного.

ПРЕЗЕНТАЦИЯ НА КОНФЕРЕНЦИИ

Содержание этой статьи было удостоено награды Japan Bifidus Foundation за поощрение исследований в 2017 году и было представлено на 22-м ежегодном собрании Japan Bifidus Foundation по вопросам кишечника. Микробиология (31 мая - 1 июня 2018 г., Токио, Япония).

Благодарности

Эта работа была поддержана Центральным институтом Якульт, Европейским исследовательским центром микробиологии Якульт Хонша ESV и Danone Nutricia Research. Я глубоко признателен всем неравнодушным за давая мне возможность получить премию за поощрение исследований Japan Bifidus Foundation.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Экбург П. Б., Бик Е. М., Бернштейн К. Н., Пурдом Е., Детлефсен Л., Сарджент М., Гилл С. Р., Нельсон К. Е., Релман Д. А.. 2005 г. Разнообразие микробной флоры кишечника человека. Наука 308: 1635–1638. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 2. Qin J, Li R, Raes J, Arumugam M, Burgdorf KS, Manichanh C, Nielsen T, Pons N, Levenez F, Yamada T, Mende DR, Li J, Xu J, Li S, Li D, Cao J, Wang B , Liang H, Zheng H, Xie Y, Tap J, Lepage P, Bertalan M, Batto JM, Hansen T, Le Paslier D, Linneberg A, Nielsen HB, Pelletier E, Renault P, Sicheritz-Ponten T, Turner K, Zhu H, Yu C, Li S, Jian M, Zhou Y, Li Y, Zhang X, Li S, Qin N, Yang H, Wang J, Brunak S, Doré J, Guarner F, Kristiansen K, Pedersen O, Parkhill J, Вайссенбах Дж., Борк П., Эрлих С.Д., Ван Дж., Ван Дж., Консорциум MetaHIT.2010 г. Каталог микробных генов кишечника человека, созданный путем метагеномного секвенирования. Природа 464: 59–65. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 3. Адлерберт I, Линдберг Э., Аберг Н., Хессельмар Б., Заалман Р., Страннегард Иллинойс, Вольд А. 2006 г. Уменьшение энтеробактериальной и усиленной колонизации стафилококками детского кишечника: эффект гигиены Стиль жизни? Pediatr Res 59: 96–101. [PubMed] [Google Scholar] 4. Фанаро С., Кьеричи Р., Геррини П., Виги В. 2003 г. Микрофлора кишечника в раннем детстве: состав и развитие.Acta Paediatr Suppl 91: 48–55. [PubMed] [Google Scholar] 5. Лей Р. Э., Петерсон Д. А., Гордон Д. И.. 2006 г. Экологические и эволюционные силы, формирующие микробное разнообразие в кишечнике человека. Клетка 124: 837–848. [PubMed] [Google Scholar] 6. Ley RE, Turnbaugh PJ, Klein S, Gordon JI. 2006 г. Микробная экология: микробы кишечника человека, связанные с ожирением. Природа 444: 1022–1023. [PubMed] [Google Scholar] 7. Фейт Дж. Дж., Гурудж Дж. Л., Шарбонно М., Субраманиан С., Зеедорф Х., Гудман А. Л., Клементе Дж. К., Найт Р., Хит А. С., Лейбель Р. Л., Розенбаум М., Гордон Дж. И..2013. Долгосрочная стабильность микробиоты кишечника человека. Наука 341: 1237439. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 8. Gosalbes MJ, Llop S, Vallès Y, Moya A, Ballester F, Francino MP. 2013. Типы микробиоты мекония, в которых преобладают молочнокислые или кишечные бактерии, по-разному связаны с экземой у матери и респираторными заболеваниями. проблемы у младенцев. Clin Exp Allergy 43: 198–211. [PubMed] [Google Scholar] 9. Хименес Э., Марин М.Л., Мартин Р., Одриозола Дж. М., Оливарес М., Хаус Дж., Фернандес Л., Родригес Дж. М..2008 г. Действительно ли меконий от здоровых новорожденных бесплоден? Res Microbiol 159: 187–193. [PubMed] [Google Scholar] 10. Фавье К.Ф., де Вос В.М., Аккерманс А.Д. 2003 г. Развитие бактериальных и бифидобактериальных сообществ в кале новорожденных. Анаэроб 9: 219–229. [PubMed] [Google Scholar] 11. Мицуока Т., Хаякава К., Кимура Н. 1974 г. [Фекальная флора человека. II. Состав бифидобактериальной флоры разных возрастных групп (авторский перевод). Zentralbl Bakteriol [Orig A] 226: 469–478 (на немецком языке).[PubMed] [Google Scholar] 12. Lundell AC, Björnsson V, Ljung A, Ceder M, Johansen S, Lindhagen G, Törnhage CJ, Adlerberth I, Wold AE, Rudin A. 2012 г. Дифференциация памяти младенческих В-клеток и ранняя бактериальная колонизация кишечника. J Immunol 188: 4315–4322. [PubMed] [Google Scholar] 13. Olszak T, An D, Zeissig S, Vera MP, Richter J, Franke A, Glickman JN, Siebert R, Baron RM, Kasper DL, Blumberg RS. 2012 г. Воздействие микробов в молодом возрасте оказывает стойкое влияние на функцию естественных Т-клеток-киллеров. Наука 336: 489–493.[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 14. Turroni F, Ribbera A, Foroni E, van Sinderen D, Ventura M. 2008 г. Микробиота кишечника человека и бифидобактерии: от состава к функциональности. Антони ван Левенгук 94: 35–50. [PubMed] [Google Scholar] 15. Таннок GW. 1999 г. Идентификация лактобацилл и бифидобактерий. Curr Issues Mol Biol 1: 53–64. [PubMed] [Google Scholar] 16. Иноуэ Р., Ушида К. 2003 г. Вертикальная и горизонтальная передача кишечных комменсальных бактерий на модели крыс.FEMS Microbiol Экол 46: 213–219. [PubMed] [Google Scholar] 17. Verhelst R, Verstraelen H, Claeys G, Verschraegen G, Van Simaey L, De Ganck C, De Backer E, Temmerman M, Vaneechoutte M. 2005 г. Сравнение окрашивания по Граму и посева для характеристики микрофлоры влагалища: определение отдельной степени, которая напоминает микрофлора I степени и пересмотренная классификация микрофлоры I степени. BMC Microbiol 5: 61. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 18. Миками К., Такахаси Х., Кимура М., Исодзаки М., Изути К., Сибата Р., Судо Н., Мацумото Х., Кога Ю.2009 г. Влияние материнских бифидобактерий на создание бифидобактерий, колонизирующих кишечник у младенцев. Педиатр Res 65: 669–674. [PubMed] [Google Scholar] 19. Макино Х., Кусиро А., Исикава Э., Муйларт Д., Кубота Х., Сакаи Т., Оиси К., Мартин Р., Бен Амор К., Узир Р., Кнол Дж., Танака Р. 2011 г. Передача кишечника Bifidobacterium longum subsp. longum штаммов от матери к ребенку, определено с помощью типирования мультилокусного секвенирования и полиморфизма длин амплифицированных фрагментов.Appl Environ Microbiol 77: 6788–6793. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 20. Макино Х., Кусиро А., Исикава Э., Кубота Х., Гавад А., Сакаи Т., Оиси К., Мартин Р., Бен-Амор К., Кнол Дж., Танака Р. 2013. Передача штаммов кишечных бифидобактерий от матери ребенку влияет на раннее развитие родов через естественные родовые пути. микробиота. PLoS One 8: e78331. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 21. Макино Х., Мартин Р., Исикава Е., Гавад А., Кубота Х., Сакаи Т., Оиси К., Танака Р., Бен-Амор К., Кнол Дж., Кусиро А.2015 г. Мультилокусное типирование штаммов бифидобактерий из фекалий младенцев и грудного молока: устойчиво ли распространяются бифидобактерии во время кормления грудью? Benef Microbes 6: 563–572. [PubMed] [Google Scholar] 22. Кидзима А., Умекава Н., Ёсида М., Осава Р. 2010 г. Анализ PFGE и аэробная и микроаэрофильная выживаемость Bifidobacterium longum subsp. longum изолированный из фекалий человеческих пар мать-дитя. Чонаи Сайкингаку Дзасси 24: 293–302 (На японском языке). [Google Scholar] 23.Альбешарат Р., Эрманн М.А., Коракли М., Язаджи С., Фогель РФ. 2011 г. Фенотипический и генотипический анализ молочнокислых бактерий в местных ферментированных продуктах питания, грудном молоке и фекалиях матерей и их младенцы. Syst Appl Microbiol 34: 148–155. [PubMed] [Google Scholar] 24. Мацумия Й, Като Н., Ватанабэ К., Като Х. 2002 г. Молекулярно-эпидемиологическое исследование вертикальной передачи вагинального вида Lactobacillus от матери новорожденному на японском языке - с помощью произвольно затравленной полимеразной цепной реакции.J Infect Chemother 8: 43–49. [PubMed] [Google Scholar] 25. Такахаши Х., Миками К., Нишино Р., Мацуока Т., Кимура М., Кога Ю. 2010 г. Сравнительный анализ свойств изолятов бифидобактерий из фекалий пар мать-младенец. J Педиатр Гастроэнтерол Нутр 51: 653–660. [PubMed] [Google Scholar] 26. Rabouam C, Comes AM, Bretagnolle V, Humbert JF, Periquet G, Bigot Y. 1999 г. Характеристики фрагментов ДНК, полученных методом случайной амплификации полиморфной ДНК (RAPD). Мол Экол 8: 493–503. [PubMed] [Google Scholar] 27.Каррисо Х.А., Пинто Ф.Р., Симас С., Нуньес С., Соуза Н.Г., Фразао Н., де Ленкаср Х., Алмейда Х. 2005 г. Оценка коэффициентов сходства на основе полос для автоматической классификации типов и подтипов микробных изолятов, анализируемых гель-электрофорез в импульсном поле. J Clin Microbiol 43: 5483–5490. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 28. Ventura M, Canchaya C, Del Casale A, Dellaglio F, Neviani E, Fitzgerald GF, van Sinderen D. 2006 г. Анализ эволюции бифидобактерий с использованием мультилокусного подхода.Int J Syst Evol Microbiol 56: 2783–2792. [PubMed] [Google Scholar] 29. Delétoile A, Passet V, Aires J, Chambaud I, Butel MJ, Smokvina T, Brisse S. 2010 г. Разграничение видов и клональное разнообразие четырех видов Bifidobacterium , выявленных методом multilocus последовательность действий. Res Microbiol 161: 82–90. [PubMed] [Google Scholar] 30. Биазуччи Дж., Бененати Б., Морелли Л., Бесси Э., Бем Дж. 2008 г. Кесарево сечение может повлиять на раннее биоразнообразие кишечных бактерий. J Nutr 138: 1796–1800 гг. [PubMed] [Google Scholar] 31.Села Д.А., Миллс Д.А. 2010 г. Уход за нашей микробиотой: молекулярные связи между бифидобактериями и олигосахаридами молока. Тенденции Microbiol 18: 298–307. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 32. Живкович AM, Герман JB, Lebrilla CB, Mills DA. 2011 г. Гликобиом грудного молока и его влияние на микробиоту желудочно-кишечного тракта младенцев. Proc Natl Acad Sci USA 108Suppl 1: 4653–4658. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 33. Асакума С., Хатакеяма Е., Урасима Т., Ёсида Е., Катаяма Т., Ямамото К., Кумагаи Х., Ашида Х., Хиросе Дж., Китаока М.2011 г. Физиология потребления олигосахаридов грудного молока младенческими кишечными бифидобактериями. J Biol Chem 286: 34583–34592. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 34. Locascio RG, Niñonuevo MR, Kronewitter SR, Freeman SL, German JB, Lebrilla CB, Mills DA. 2009 г. Универсальная и масштабируемая стратегия гликопрофилирования бифидобактериями олигосахаридов грудного молока. Microb Biotechnol 2: 333–342. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 35. Сяо Дж.З., Такахаши С., Нисимото М., Одамаки Т., Яешима Т., Ивацуки К., Китаока М.2010 г. Распределение in vitro ферментационной способности лакто- N -биозы I, основного строительного блока грудного молока олигосахариды в штаммах бифидобактерий. Appl Environ Microbiol 76: 54–59. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 36. Мицуока Т., Канеучи К. 1977 г. Экология бифидобактерий. Am J Clin Nutr 30: 1799–1810 гг. [PubMed] [Google Scholar] 37. Фриклунд Б., Туллус К., Берглунд Б., Бурман Л.Г. 1992 г. Важность окружающей среды и фекальной флоры младенцев, медперсонала и родителей как источников колонизации грамотрицательных бактерий новорожденные в трех неонатальных палатах.Инфекция 20: 253–257. [PubMed] [Google Scholar] 38. Муроно К., Фудзита К., Йошикава М., Сайджо М., Иньяку Ф., Какехаши Х., Цукамото Т. 1993 г. Приобретение нематериальных Enterobacteriaceae младенцами, родившимися в больницах. J Педиатр 122: 120–125. [PubMed] [Google Scholar] 39. Маккартни А.Л., Вэньчжи В., Тэннок Г.В. 1996 г. Молекулярный анализ состава бифидобактериальной и лактобактериальной микрофлоры человека. Appl Environ Microbiol 62: 4608–4613. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 40.Одамаки Т., Боттачини Ф., Като К., Мицуяма Э., Ёсида К., Хоригоме А., Сяо Дж. З., ван Синдерен Д. 2018. Геномное разнообразие и распространение Bifidobacterium longum subsp. longum через человека срок жизни. Sci Rep 8: 85 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 41. Перес П.Ф., Доре Дж., Леклерк М., Левенес Ф., Беньякуб Дж., Серрант П., Сегура-Роггеро И., Шиффрин Э.Дж., Доннет-Хьюз А. 2007 г. Бактериальный импринтинг иммунной системы новорожденных: уроки материнских клеток? Педиатрия 119: e724 – e732.[PubMed] [Google Scholar] 42. Мартин Р., Ланга С., Ревириего С., Хименес Э., Марин М.Л., Оливарес М., Боза Дж., Хименес Дж., Фернандес Л., Хаус Дж., Родригес Дж. М.. 2004 г. Комменсальная микрофлора грудного молока: новые перспективы пищевой бактериотерапии и пробиотиков. Тенденции Food Sci Technol 15: 121–127. [Google Scholar] 43. Йост Т., Лакруа С., Брэггер С., Шассар К. 2013. Оценка бактериального разнообразия в грудном молоке с использованием культурально-зависимого и независимого от культуры подходов. Br J Нутрь 110: 1253–1262. [PubMed] [Google Scholar] 44.Мартин В., Мальдонадо-Барраган А., Молес Л., Родригес-Баньос М., Кампо Р. Д., Фернандес Л., Родригес Д. М., Хименес Э. 2012 г. Распространение бактериальных штаммов между грудным молоком и младенческими фекалиями. J Hum Lact 28: 36–44. [PubMed] [Google Scholar] 45. Йост Т., Лакруа С., Брэггер С.П., Роша Ф., Шассар К. 2014 г. Вертикальный перенос кишечных бактерий от матери к новорожденному при грудном вскармливании. Environ Microbiol 16: 2891–2904. [PubMed] [Google Scholar] 46. Солис Дж., Де Лос Рейес-Гавилан К. Г., Фернандес Н., Марголлес А., Геймонд М.2010 г. Создание и развитие микробиоты молочнокислых бактерий и бифидобактерий в грудном молоке и кишечнике младенцев. Анаэроб 16: 307–310. [PubMed] [Google Scholar] 47. Рамзи Д.Т., Кент Дж. К., Оуэнс Р. А., Хартманн ЧП. 2004 г. Ультразвуковое исследование выделения молока в груди кормящих женщин. Педиатрия 113: 361–367. [PubMed] [Google Scholar] В грудном молоке обнаружено

бифидобактерий - влияние на питание детей грудного возраста

На протяжении многих лет исследования показали, что грудное молоко содержит пребиотики - неперевариваемые углеводы, которые стимулируют рост пробиотиков и уравновешивают кишечную флору.Первоначально считалось, что грудное молоко не содержит пробиотиков, а просто способствует росту бифидобактерий из-за присутствия пребиотиков. Однако недавние исследования доказали, что грудное молоко действительно содержит пробиотики - многочисленные штаммы бифидобактерий, которые, как было показано, уравновешивают кишечную флору и помогают развивать здоровую иммунную систему у младенцев. Результаты клинических испытаний показали, что более 85% образцов грудного молока содержат бифидобактерии, 1,2 , что еще раз подтверждает иммунные преимущества, предлагаемые пробиотиками.

В младенчестве бифидобактерии способствуют развитию барьерной функции кишечника и модулируют реакцию иммунной системы. 3-8 В нашей все более стерильной среде младенцы, рожденные через кесарево сечение, получающие антибиотики или находящиеся на искусственном вскармливании (без добавления пробиотиков), могут получить наибольшую пользу от добавок бифидобактерий.

Преимущества пробиотиков могут сохраняться в детстве, если продолжать прием добавок по мере того, как в рацион малышей вводится твердая пища.Обычная смесь для младенцев или детей ясельного возраста, содержащая бифидобактерии, способствует преобладанию бифидобактерий в кишечнике и положительно способствует сбалансированной кишечной флоре.

Почему следует выбирать бифидобактерии для приготовления детских смесей?
Бифидобактерии естественным образом содержатся в грудном молоке, влияя на микробный состав кишечной флоры младенца. Они составляют 80–90% всей кишечной флоры младенцев, находящихся на грудном вскармливании. 9,10 Добавка помогает увеличить закисление просвета кишечника, выработку секреторного IgA и муцина, а также снижает проницаемость кишечного барьера. 3-6,10-13 После прекращения грудного вскармливания было бы естественным выбором порекомендовать обычную детскую смесь, содержащую бифидобактерии.

Пробиотики для недоношенных детей
В отделениях интенсивной терапии недоношенных детей, получающих смесь, чаще всего кормят смесью, специально разработанной для удовлетворения их уникальных потребностей в питании. К сожалению, некротический энтероколит (НЭК) является распространенным заболеванием в этой уязвимой группе населения. Это часто приводит к разрушительным последствиям, связанным с повышенной заболеваемостью и смертностью недоношенных детей. 14 Точный патогенез НЭК до сих пор полностью не изучен, но повреждение слизистой оболочки из-за ряда факторов, по-видимому, является одной из основных причин.

Связанные эффекты бифидобактерий на барьерную функцию кишечника и общую поддержку иммунной системы были изучены в контексте многих болезненных состояний, включая НЭК. Новая наука показала положительные результаты при использовании пробиотиков у недоношенных детей с НЭК. В метаанализе 9 испытаний с участием 1425 недоношенных детей добавление пробиотиков значительно снизило частоту тяжелых НЭК (стадии II – III) и смертность. 14 НЭК - это в первую очередь болезнь недоношенных детей. Из 1–7,7% случаев НЭК в отделении интенсивной терапии 10% могут возникать у доношенных новорожденных, поэтому эти данные могут иметь отношение и к этой популяции. 15 В настоящее время не существует смесей для недоношенных детей, содержащих пробиотики, поэтому грудное молоко является единственным источником пробиотических культур для этих младенцев. Однако, как только недоношенный ребенок будет готов перейти на обычную молочную смесь, можно рассмотреть возможность использования смеси с пробиотиками.

Добавки бифидобактерий безопасны для всех младенцев с рождения
Использование пробиотиков у младенцев имеет надежные показатели безопасности 5,16 - прямо с рождения.Бифидобактерии - одни из наиболее часто изучаемых и широко используемых пробиотиков. Он широко изучался на младенцах в течение почти 20 лет, и не было доказано, что он вызывает отрицательные эффекты, такие как инфекция, при употреблении. В частности, Nestlé кормила младенцев смесями, содержащими Bifidobacterium lactis (B. lactis), более 15 лет и в 30 странах, а недавно представила эти полезные смеси в США

.

В 2007 г. была выпущена первая в США обычная детская смесь, одобренная Управлением по контролю за продуктами и лекарствами.Был введен С., содержащий бифидобактерии. Существуют смеси с полезными культурами, которые можно использовать для обычных младенцев (от 0 до 12 месяцев) в качестве дополнения или альтернативы грудному молоку, когда грудное вскармливание невозможно. Смесь с полезными культурами для детей старшего возраста и детей ясельного возраста была представлена ​​в 2008 году и подходит для малышей (9–24 месяца), когда они переходят на твердую пищу.

Список литературы

  1. Gueimonde M, Laitinen K, Salminen S, Isolauri E.Грудное молоко: источник бифидобактерий для развития и созревания кишечника младенца? Неонатология 2007; 92: 64–6.
  2. Gronlund MM, Gueimonde M, Laitinen K, Kociubinski G, Grönroos T, Salminen S et al. Материнское грудное молоко и кишечные бифидобактерии определяют композиционное развитие микробиоты Bifidobacterium у младенцев с риском аллергических заболеваний. Clin Exp Allergy 2007; 37: 1764–72.
  3. Fukushima Y, Kawata Y, Hara H, Terada A, Mitsuoka T.Влияние пробиотической смеси на продукцию кишечного иммуноглобулина А у здоровых детей. Int J Food Microbiol 1998; 42: 39–44.
  4. Langhendries JP, Detry J, Van Hees J, Lamboray JM, Darimont J, Mozin MJ et al. Влияние ферментированной детской смеси, содержащей жизнеспособные бифидобактерии, на состав фекальной флоры и pH здоровых доношенных детей. J Pediatr Gastroenterol Nutr 1995; 21: 177–81.
  5. Saavedra JM, Abi-Hanna A, Moore N, Yolken RH. Долгосрочное употребление смесей для младенцев, содержащих живые пробиотические бактерии: переносимость и безопасность. Am J Clin Nutr 2004; 79: 261–7.
  6. Stratiki Z, Sevastiadou S, Stamouli K, Kastanidou O, Skouroliakou M, Kostalos C. Влияние коровьего молока с добавкой бифидобактерий на кишечную проницаемость недоношенных детей. Early Hum Dev 2007; 83: 575–9.
  7. Walker WA, Isolauri E. Понимание использования пробиотиков в педиатрической популяции. Contemp Ped 2007; Дополнение: 1–6.
  8. Weizman Z, Asli G, Alsheikh A. Влияние пробиотической детской смеси на инфекции в детских учреждениях: сравнение двух пробиотических агентов. Педиатрия 2005; 115: 5–9.
  9. Йошиока Х, Исэки К., Фудзита К. Развитие и различия кишечной флоры в неонатальном периоде у младенцев, вскармливаемых грудью и искусственно вскармливаемых грудью. Педиатрия 1983; 72: 317–21.
  10. Фукс Л.Дж., Гибсон ГР. Пробиотики как модуляторы кишечной флоры. Br J Nutr 2002; 88 (Приложение 1): S39 – S49.
  11. Fukushima Y, Li S-T, Hara H, Terada A, Mitsuoka T. Влияние формулы для последующего наблюдения, содержащей бифидобактерии (NAN BF), на фекальную флору и фекальные метаболиты у здоровых детей. Bioscience Microflora 1997; 16: 65–72.
  12. Кирьявайнен П.В., Арвола Т., Салминен С.Дж., Изолаури Э. Аберрантный состав кишечной микробиоты младенцев с аллергией: цель бифидобактериальной терапии при отлучении от груди? Gut 2002; 51: 51–5.
  13. Мак Д.Р., Лебель С. Роль пробиотиков в модуляции кишечных инфекций и воспалений. Curr Opin Gastroenterol 2004; 20: 22–6.
  14. АльФалех К., Басслер Д. Пробиотики для профилактики некротического энтероколита у недоношенных детей. Кокрановская база данных системных обзоров 2008: 1–19.
  15. Kosloske AM. Эпидемиология некротического энтероколита. Acta Paediatr Suppl 1994; 396: 2–7.
  16. Szajewska H, ​​Setty M, Mrukowicz J, Guandalini S. Пробиотики при желудочно-кишечных заболеваниях у детей: веские и несложные доказательства эффективности. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2006; 42 (5): 454–75.

Неонатальная жидкость из ротовой полости как путь передачи бифидобактерий в кишечник младенца сразу после рождения

Субъекты и сбор образцов

Это исследование было одобрено Комитетом по этике Школы здравоохранения и спортивных наук Университета Джунтендо, и было получено информированное письменное согласие. получено от всех матерей.Все эксперименты проводились в соответствии с действующими правилами. В этом исследовании приняли участие пятнадцать здоровых японских пар мать-младенец. Все матери были старше 20 лет, и все новорожденные были доношенными и родились естественным путем. Критерии исключения при приеме на работу включали (1) беременных женщин с метаболическими нарушениями, такими как гестационная гипертензия и гестационный диабет; (2) многоплодная беременность; (3) кесарево сечение в прошлом; (4) использование пероральных противомикробных препаратов в течение 1 месяца после отбора проб; (5) наличие в анамнезе приема лекарств или наличие серьезных заболеваний, требующих приема лекарств; (6) инфекции, такие как гепатит B, ВИЧ и сифилис; и (7) определение непригодности для данного исследования исследователем по другим причинам.Подробная информация представлена ​​в дополнительной таблице 5. Акушерки собирали образцы ОВ путем аспирации из полости рта новорожденных сразу после рождения в родильном зале. Образцы MF были взяты у матерей, испражнявшихся во время родов (ID02, 06, 12 и 13). Образцы OF и MF хранили при 4 ° C в анаэробных условиях до культивирования, которое происходило в течение 6 дней после сбора и обычно проводилось на следующий день после сбора. Образцы IF также собирали примерно через месяц после родов и хранили при -20 ° C.Все образцы были перенесены из больницы в лабораторию Morinaga Milk Industry и хранились при -80 ° C (после культивирования OF) для дальнейшего анализа.

Грудное молоко

BM, используемый для культивирования бактерий, присутствующих в неонатальной OF, был получен из запасов BM в отделении интенсивной терапии новорожденных Университета Джунтендо. BM центрифугировали при 1200 × g в течение 10 минут при 4 ° C для удаления жира, а супернатант дополнительно центрифугировали при 6000 × g в течение 1 часа при 4 ° C для удаления клеток и другого физиологического мусора.Супернатанты из пяти образцов BM объединяли и хранили при -80 ° C до их использования для культивирования.

Культивирование

Образцы OF новорожденных культивировали в анаэробных условиях в объединенных BM или YCFA в течение 48 часов с использованием многоканального ферментера с контролируемым pH (Bio Jr. 8; ABLE, Tokyo, Japan), как описано Satoh et al ., С небольшие модификации 32 . Перед инокуляцией BM или YCFA в сосуде поддерживали при 37 ° C при постоянном перемешивании со скоростью 87 об / мин в анаэробных условиях с доведением pH до 6.5 с NaOH. Затем неонатальный OF инокулировали в BM или YCFA до конечной концентрации 0,1 или 0,2% (об. / Об.), Как показано в дополнительной таблице 1. После начала культивирования pH постоянно контролировали и доводили до pH 5,5 с помощью NaOH, когда pH среды упал ниже 5,5. Культуральный бульон собирали через 16, 24 и 48 ч и центрифугировали при 10000 × g в течение 10 минут при 4 ° C. Супернатант и бактериальный осадок собирали и хранили при -80 ° C до дальнейшей обработки. Никаких изменений pH и общего числа бактериальных клеток не наблюдалось в BM или YCFA, инкубированных без инокуляции.

Профилирование микробиотиков

Профили микробиотиков оценивали путем секвенирования области V3-V4 гена 16S рРНК, как описано ранее 33 . Вкратце, метод взбивания шариков использовали для извлечения ДНК из образцов OF (20 мкл), бактериальных гранул из посткультивированного бульона (1,5 мл) и фекалий (20 мг). Затем ДНК амплифицировали с помощью ПЦР с использованием праймеров Tru357F (5'-CGCTCTTCCGATCTCTGTACGGRAGGCAGCAG-3 ') и Tru806R (5'-CGCTCTTCCGATCTGACGGACTACHVGGGTWTCTAAT-3').Затем адаптеры секвенирования для Illumina MiSeq были впоследствии лигированы с ампликонами, после чего образцы были очищены с использованием набора для очистки QIAquick 96 PCR Purification Kit (Qiagen, Валенсия, Калифорния, США) и затем объединены. Библиотеки секвенировали на платформе Illumina MiSeq с использованием набора реагентов MiSeq v3 Reagent Kit 3 (Illumina Inc., Сан-Диего, Калифорния, США). После удаления последовательностей, согласующихся с данными Genome Reference Consortium, сборка человека 37 (GRCh47) и считываний phiX из необработанных считываний парных концов Illumina, последовательности были проанализированы с использованием QIIME версии 1.8.0. как описано ранее 33 . Потенциальные химерные последовательности длиной менее 150 п.н. со средней оценкой качества менее 25 или последовательности без парных прочтений также удалялись. Таксономическая классификация была выполнена с использованием справочной базы данных Greengenes с 97% -ным порогом полноразмерных последовательностей OTU. Данные на уровне типа и рода показаны в дополнительных таблицах 6 и 7 соответственно. Расстояния UniFrac были рассчитаны с использованием программного обеспечения QIIME.

ПЦР в реальном времени для количественного определения количества клеток

Условия количественной ПЦР в реальном времени (кПЦР) и стандартные штаммы, используемые для количественной оценки, были описаны ранее 34 , а также подробная информация о наборе праймеров, использованном в этом исследовании приведен в дополнительной таблице 8.Образцы ДНК разводили от 1 до 1000 раз для количественной ПЦР. Общее количество бактерий определяли с использованием универсальных праймеров для гена 16S рРНК (Tru357F и Tru806R) и Bifidobacterium longum ssp. longum ( B. longum ) JCM1217 T был стандартным штаммом. Кроме того, уровни численности каждого вида Bifidobacterium определяли с использованием B. adolescentis JCM1275 T , B. animalis ssp. lactis JCM1190 T , B.bifidum JCM1255 T , B. breve JCM1192 T , B. dentium JCM1195 T , B. longum JCM1217 T и B. для количественной оценки конкретных видов. B. longum JCM1217 T также использовали для оценки общего количества клеток бифидобактерий. Предел обнаружения (LOD) был определен как менее 10 4 клеток / мл или г, и данные были рассчитаны с использованием LOD / 2 в качестве дополнительного значения 35 .

Выделение штаммов бифидобактерий

Для выделения штаммов бифидобактерий предварительно и посткультивированные образцы OF и IF анаэробно высевали на пропионатный агар TOS (Eiken Chemical, Токио, Япония) или модифицированный агар, в котором источник углерода был изменен с галактоолигосахариды на 2'-фукозиллактозу, D - (+) - целлобиозу или L - (+) - арабинозу с добавкой 50 мг / л мупироцина (Merck KGaA, Дармштадт, Германия) при 37 ° C в течение 48 часов, как описано ранее 36 .Из каждого образца случайным образом выбирали максимум 20 колоний на образец и культивировали в Difco Lactobacilli MRS (Becton Dickinson, NJ, USA) с добавлением 0,05% L -цистеина HCl (Kanto Chemical, Токио, Япония) при 37 ° C. в течение 16 ч в анаэробных условиях. После осаждения бактерий центрифугированием бактерии инкубировали при 37 ° C в течение ночи с буфером для ферментативного лизиса [20 мМ Трис-HCl (pH 8,0), 2 мМ ЭДТА, 0,012% (об. / Об.) Тритон X-100, 20 лизоцим в мг / мл и мутанолизин 500 Ед / мл].Затем суспензию клеток обрабатывали протеазой К и РНКазой, и ДНК бактерий экстрагировали с использованием набора DNeasy Blood & Tissue Kit, как описано ранее 37 . Виды были подтверждены как бифидобактерии с помощью кПЦР с использованием набора праймеров, специфичных для бифидобактерий. Затем каждый изолят бифидобактерий подвергали ПЦР-анализу с произвольной амплификацией полиморфной ДНК (RAPD) для идентификации штамма с использованием праймеров OPF-09 (5'-CCAAGCTTCC-3 ') или OPF-11 (5'-TTGGTACCCC-3').Изоляты из того же образца с одинаковым рисунком RAPD-ПЦР считались одним и тем же штаммом и подвергались дальнейшему секвенированию геномной ДНК, и подробная информация об изолятах представлена ​​в дополнительных таблицах 2 и 3.

Секвенирование генома и сборка последовательности

Геномную ДНК экстрагировали из субкультивированных штаммов в MRS, как описано выше, и библиотеки получали с использованием набора для подготовки библиотеки ДНК Nextera XT (Illumina Inc.) в соответствии с инструкциями производителя.Парное секвенирование, качественная обрезка и сборка de novo необработанных считываний были выполнены с использованием платформы Illumina MiSeq с набором реагентов MiSeq v3 и программным пакетом CLC Genomics Workbench (v 8.0) (Qiagen, Валенсия, Калифорния, США) с настройками по умолчанию, за исключением того, что минимальная длина контига была установлена ​​на уровне 500 бит / с. Контиги, состоящие из менее 100 чтений, были удалены. Предсказание и аннотация открытой рамки считывания (ORF) были выполнены с использованием DDBJ Fast Annotation and Submission Tool (DFAST) с настройками по умолчанию 38 .

Анализ генома

Шесть геномов бифидобактерий ( B. adolescentis ATCC15703, B. bifidum PRL2010, B. breve UCC2003, B. dentium Bd1, B. DSM20438) были взяты из общедоступной базы данных NCBI для сравнительных целей. Сравнение аминокислотных последовательностей проводили с использованием двунаправленного выравнивания BLAST все против всех (отсечка: значение E 0,0001, с идентичностью по меньшей мере 50% по меньшей мере 50% любой последовательности белка) с последующим кластеризацией в семейства белков. с использованием MCL, реализованного в конвейере mclblastline, v12-0678 36 .Изоляты из того же образца в одном кластере MCL были исключены из дальнейшего анализа.

Для штаммов-кандидатов, которые, как ожидается, будут иметь высокое сходство в парах OF и IF согласно результатам кластерного анализа, их геномное сходство оценивалось анализом OrthoANI с онлайн-калькулятором ANI ChunLab (https://www.ezbiocloud.net / tools / ani) 39 . Значение ANI более 99,5% было критерием, используемым для идентификации идентичных штаммов 36 .

Статистический анализ

Общее количество клеток, полученное во время культивирования, анализировали с помощью однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA) с последующим тестом Тьюки-Крамера и тестом Велча t , соответственно, с использованием SPSS Statistics версии 22.0 (IBM Corp., Армонк, штат Нью-Йорк, США) с уровнем значимости, определенным при p <0,05.

Границы | Почему не у всех младенцев есть бифидобактерии в стуле?

Представители рода Bifidobacterium в большом количестве присутствуют в стуле большинства детей грудного возраста в течение начального периода жизни, получающего исключительно молоко, особенно в возрасте 2–3 месяцев (Harmsen et al., 2000; Фавье и др., 2002; Мариат и др., 2009; Coppa et al., 2011; Turroni et al., 2012; Яцуненко и др., 2012; Tannock et al., 2013; Barrett et al., 2015). Бифидобактерии доминируют в микробиоте стула независимо от того, кормят ли младенцев грудным молоком или смесью на основе молока жвачных животных (коровьего или козьего). Однако относительная численность бифидобактерий у детей, вскармливаемых грудным молоком, примерно на 20% выше, чем у детей, вскармливаемых смесью (Tannock et al., 2013). Большее количество бифидобактерий у младенцев, вскармливаемых грудным молоком, можно, по крайней мере частично, объяснить тем фактом, что виды бифидобактерий, которые обогащены в кишечнике младенца, могут использовать олигосахариды человеческого молока (HMO) или их компоненты в качестве субстратов для роста (Sela и другие., 2008; LoCascio et al., 2010; Гарридо и др., 2013). Таким образом, можно было ожидать, что бифидобактерии будут обнаруживаться в микробиоте стула каждого ребенка, получающего грудное вскармливание, из-за наличия соответствующих субстратов для роста. Это ожидание не подтверждается полностью, потому что часть младенцев имеет очень низкую численность или неопределяемые бифидобактерии в составе фекальной микробиоты независимо от грудного молока или кормления смесью (Young et al., 2004; Gore et al., 2008; Tannock et al. ., 2013). Этим младенцам не вводили антибиотики. Чем же тогда объяснить отсутствие бифидобактерий?

Дефицит субстрата для роста?

«Отрицательные по бифидобактериям» младенцы были обнаружены как в грудном молоке, так и в детях, находящихся на искусственном вскармливании. Следовательно, эффект субстрата для роста бактерий маловероятен. В то время как грудное молоко богато HMO, а молоко жвачных животных не имеет этих сложных молекул (хотя более простые формы, такие как сиалированная лактоза, присутствуют в очень малых количествах), бифидобактерии по-прежнему являются наиболее распространенным таксоном в фекалиях младенцев, вскармливаемых смесью без добавок галактозы. - или фруктоолигосахариды (Tannock et al., 2013). В этом случае лактоза и / или гликопротеины и гликолипиды являются вероятными субстратами для роста бифидобактерий (Turroni et al., 2010; Bottacini et al., 2014; O'Callaghan et al., 2015) в кишечнике младенцев, вскармливаемых исключительно молоком. Однако существует необходимость в поддержке геномного анализа бифидобактерий с помощью исследований питания бифидобактерий на основе субстратов, присутствующих в кишечнике детей, вскармливаемых исключительно молоком (кроме HMO).

Отсутствие чувствительности методов обнаружения бифидобактерий?

Очевидной причиной наличия бифидобактерий-отрицательных фекалий является недостаточная чувствительность методов обнаружения.Методы, основанные на культуре, обычно имеют нижний предел обнаружения 1 × 10 3 на грамм, флуоресцентная гибридизация in situ (FISH) 1 × 10 6 - 10 7 на грамм (ручной или цифровой подсчет соответственно) или ~ 4 × 10 4 методом проточной цитометрии и денатурирующим градиентным гель-электрофорезом ампликонов ПЦР ~ 1 × 10 5 - 10 6 клеток (Welling et al., 1997; Jansen et al., 1999; Zoetendal et al., 2001, 2002) или 1 × 10 4 с использованием внутренних транскрибированных спейсерных мишеней (Milani et al., 2014). Методы высокопроизводительного секвенирования ДНК, такие как Illumina, генерируют десятки тысяч последовательностей гена 16S рРНК на образец ДНК, но может быть несколько сотен OTU на образец. Таким образом, таксоны, присутствующие в очень низкой численности, могут быть пропущены. Однако ссылка на кривые разрежения (альфа-разнообразие) во время анализа последовательности покажет, почти полностью покрыт микробиота или нет. Следовательно, хотя отсутствие достаточной чувствительности методов обнаружения остается вероятным, оно, вероятно, не дает полного объяснения.

Популяции бифидобактерий день ото дня растут и падают?

В большинстве исследований фекальной микробиоты исследуется единственный образец фекалий каждого участвующего человека. О комплексных временных исследованиях фекальной микробиоты для определения ежедневных изменений в составе не сообщалось. Возможно, что бифидобактерии присутствуют в кале всех детей в раннем возрасте, но в некоторые дни популяция бифидобактерий падает до неопределяемого уровня. Популяции бифидобактерий в кале некоторых взрослых без заболеваний динамичны с точки зрения состава штаммов, поэтому существует определенная поддержка концепции временной нестабильности в популяции бифидобактерий микробиоты (McCartney et al., 1996). На рисунке 1А показаны данные о фекалиях, собираемых через определенные промежутки времени у младенцев в течение первых 12 недель жизни. В этом примере наблюдались колебания численности бифидобактерий в фекалиях отдельных детей от очень низкой численности до отсутствия. Поразительно, но бифидобактерии не были обнаружены ни в одном из образцов кала одного ребенка. Таким образом, младенцы, свободные от бифидобактерий, действительно кажутся реальным явлением.

Рисунок 1. (A) Примеры младенцев без бифидобактерий или с очень низким содержанием бифидобактерий в кале в течение первых 12 недель жизни.Бифидобактерии не были обнаружены путем секвенирования ДНК ампликонов гена 16S рРНК через 6 и 12 недель в фекалиях AF067; 6, 8, 10 и 12 недель в AF70; 8 и 10 недель в AF075; и 6 и 12 недель в AF090. (B) Сравнение количества бифидобацериалов в кале младенцев, рожденных вагинально или путем кесарева сечения. Обратите внимание, что в обеих группах у некоторых младенцев бифидобактерии не обнаружены. (C) Сравнение численности бактериальных семейств в микробиотах младенцев, вскармливаемых грудным молоком, по отношению к численности бифидобактерий. (D) Сравнение численности бактериальных семейств в микробиотах младенцев, вскармливаемых смесью из коровьего молока, по отношению к численности бифидобактерий. (E) Сравнение численности бактериальных семейств в микробиотах младенцев, вскармливаемых смесью из козьего молока, по отношению к численности бифидобактерий. Обратите внимание, что численность Lachnospiraceae увеличилась, когда относительная численность бифидобактерий низкая. Цифры по Tannock et al. (2013), воспроизведено с разрешения.

Окно заражения (возможность / колонизация) было упущено?

Окно возможностей - это короткий период времени, в течение которого существует иначе недостижимая возможность.После того, как окно возможностей закрывается, возможность перестает существовать. Кауфилд был первым, кто описал «окно инфекционности» при приобретении комменсальных бактерий. Его примером был Streptococcus mutans в ротовой полости детей (Caufield et al., 1993; Li and Caufield, 1995). Этот вид бактерий связан с зубным налетом, поэтому период инфицирования совпал с прорезыванием первых коренных зубов. До этого среда обитания S. mutans не была доступна в ротовой полости детей этого вида.Гипотеза Кауфилда напоминает нам, что многие факторы должны совпадать, чтобы способствовать установлению комменсала в участке тела. Младенцы, родившиеся после кесарева сечения, имеют более низкую распространенность бифидобактерий в кале в раннем возрасте (рис. 1B). По аналогии с исследованиями Кауфилда, это, вероятно, связано с отсутствием благоприятных возможностей для колонизации бифидобактериями кишечника по сравнению с процессом вагинальных родов. Примечательно, что мы обнаружили, что у 36% младенцев, рожденных после кесарева сечения, отсутствовали бифидобактерии, тогда как у 18% младенцев, рожденных естественным путем, не было бифидобактерий в возрасте 2 месяцев (Tannock et al., 2013).

Другие таксоны Заменить бифидобактерии у некоторых младенцев?

Если бифидобактерии не колонизировали кишечник некоторых младенцев, они, вероятно, будут заменены другими таксонами, которые могут обладать необходимыми метаболическими свойствами, чтобы заполнить освободившуюся экологическую нишу. В исследовании фекальных микробиот австралийских младенцев, которых кормили грудным молоком или смесью, мы сравнили относительную численность бактериальных таксонов у младенцев с очень низким (<10%) или более высоким (> 10%) содержанием бифидобактерий (Tannock и другие., 2013). Анализ состава этих микробиот показал, что, когда численность Bifidobacteriaceae была низкой, численность Lachnospiraceae имела тенденцию быть больше у младенцев во всех диетических группах (Рисунки 1C – E). Также наблюдалась тенденция к увеличению численности Erysipelotrichaceae у детей, вскармливаемых смесью с низким содержанием бифидобактерий, что гораздо более очевидно в случае детей, вскармливаемых козьим молоком. Эти наблюдения предполагают, что да, другие таксоны могут заменить бифидобактерии в фекальной микробиоте некоторых детей.

Каковы последствия недостатка бифидобактерий в кишечнике?

Отсутствие бифидобактерий в кишечнике может отрицательно сказаться на развитии ребенка. Любопытный феномен, заключающийся в том, что материнское молоко содержит вещества, не используемые в питании потомства, но способствующие росту бифидобактерий, уникален для человека. Для этого должна быть веская причина. Обогащение популяций бифидобактерий в кишечнике имеет тенденцию минимизировать численность других видов бактерий, поэтому функцию конкурентного исключения можно приписать HMO.Кроме того, HMO может действовать как «приманка» в кишечнике, связываясь с патогенами (бактериями и вирусами) и их токсинами и тем самым ограничивая контакт с поверхностями слизистой оболочки (Kunz et al., 2000). Большое разнообразие структур HMO, которые, как известно, встречаются в материнском молоке, предполагает большое разнообразие функций-приманок (Pacheco et al., 2015). Независимо от того, где в мире живут младенцы, микробиомы их кишечника обогащены генами, участвующими в биосинтезе фолиевой кислоты de novo (Яцуненко и др., 2012). Напротив, микробиом взрослых способствует синтезу другого витамина B, кобаламина. Синтез фолиевой кислоты является атрибутом бифидобактерий, и фолат может всасываться из толстой кишки, поэтому обогащение бифидобактериями в кишечнике младенца может внести важный вклад в питание детей грудного возраста (Aufreiter et al., 2009; D'Aimmo et al., 2012; Lakoff et al., 2014). Фолиевая кислота действует как кофермент или сопутствующий субстрат в одноуглеродных переносах при синтезе нуклеиновых кислот и метаболизме аминокислот.Одной из наиболее важных фолат-зависимых реакций является превращение гомоцистеина в метионин при синтезе S-аденозилметионина, важного донора метила. Другая фолат-зависимая реакция, метилирование дезоксиуридилата до тимидилата при образовании ДНК, необходима для правильного деления клеток (Crider et al., 2012). Неонатальное питание действительно могло быть очень важной причиной парадигмы HMO-бифидобактерии-младенец. Основа структуры и функций мозга закладывается в раннем возрасте благодаря генетическим, биологическим и психосоциальным воздействиям.Скорость роста мозга новорожденных превышает скорость роста любого другого органа или ткани тела (Wang, 2012). Младенец рождается с уже сформированными нейронами, но синаптические связи между этими клетками в основном устанавливаются и развиваются после рождения, вызывая большую потребность в питании для биосинтеза ганглиозидов (Svennerholm et al., 1989). Питание младенца в раннем возрасте влияет на процессы развития мозга, включая познание (Uauy and Peirano, 1999; Uauy et al., 2001). В то время как длинноцепочечные жирные кислоты (такие как докозагексаеновая кислота) были в центре внимания большей части исследований в этой области, соблазнительные данные исследований теперь показывают, что сиаловая кислота (N-ацетилнейраминовая кислота), углевод с 9 атомами углерода, также является необходимое питательное вещество для оптимального развития мозга и познания (Gibson, 1999; Meldrum et al., 2012; Ван, 2012). Поразительно, но кортикальная ткань головного мозга человека содержит в 4 раза больше сиаловой кислоты, чем ткань других исследованных млекопитающих (Wang et al., 1998). Более того, концентрация сиаловой кислоты в мозге детей, вскармливаемых грудным молоком, выше, чем у детей, вскармливаемых смесью (Wang et al., 2003). Эти факты коррелируют с уникальной биохимией грудного молока и уникальной бактериологией кишечника младенца. Интересно, что Ruhaak et al. (2014) сообщили об обнаружении сиалилированных олигосахаридов (3'-сиалил-лактоза, 6'-сиалил-лактоза, 3'-сиалил-лактозамин, 6'-сиалил-лактозамин), которые могут быть результатом гидролиза HMO в крови младенцев. .Таким образом, биохимия бифидобактерий в кишечнике может иметь внекишечное питательное влияние, важное для развития мозга. Однако, возможно, таксоны, которые в изобилии присутствуют в кишечнике младенцев в отсутствие бифидобактерий, могут выполнять те же функции? Эта интересная возможность еще предстоит изучить.

Дети без бифидобактерий - важные источники знаний?

Рене Дубос исследовал в ряде книг взаимодействие между силами окружающей среды и физическим, умственным и духовным развитием человечества.Его статья, опубликованная в журнале Pediatrics , озаглавленная «Биологический фрейдизм: длительные эффекты ранних влияний окружающей среды», раскрывает эту тему (Dubos et al., 1966). Основываясь на результатах экспериментов, проведенных на мышах, свободных от конкретных патогенов, авторы пришли к выводу, что «со всех точек зрения ребенок действительно является отцом мужчины, и по этой причине нам необходимо разработать экспериментальную науку, которая могла бы быть называется биологическим фрейдизмом. Социально и индивидуально реакция людей на условия настоящего всегда обусловлена ​​биологической памятью о прошлом.”

Биологический фрейдизм явно имеет отношение к концепции, согласно которой первые 1000 дней, между зачатием и вторым днем ​​рождения ребенка, предлагают уникальное окно возможностей для формирования более здорового и благополучного будущего. Питание в течение этого 1000-дневного окна может сильно повлиять на способность ребенка расти и учиться. Влияние микробиоты на развитие ребенка в раннем возрасте потенциально очень важно, и необходимо провести много продольных исследований, чтобы прояснить, существуют ли продолжающиеся, важные с медицинской точки зрения воздействия микробиоты, включая бифидобактерии, которые сохраняются на протяжении всей жизни человека. .Сравнение когнитивного развития и общего состояния здоровья детей, которые были свободны от бифидобактерий, и детей, которые были свободны от бывших бифидобактерий, а затем намеренно подверглись воздействию бифидобактерий, в ходе длительного исследования, продолжающегося, возможно, 10 или 20 лет, может сказать нам, являются ли эти бактерии оптимизировать краткосрочное и / или долгосрочное развитие и здоровье человека.

Авторские взносы

GT написал статью. BL, PL и KW предоставили данные, описанные в статье.

Заявление о конфликте интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Список литературы

Aufreiter, S., Gregory, J.F., Pfeiffer, C.M., Fazil, Z., Kim, Y.-I., Marcon, N., et al. (2009). Фолат всасывается через толстую кишку взрослых: данные по вливанию в слепую кишку 13 C-меченной [6S] -5-формтетрагидрофолиевой кислоты. Am. J. Clin. Nutr. 90, 116–123. DOI: 10.3945 / ajcn.2008.27345

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Барретт, Э., Дешпандей, А. К., Райан, К. А., Демпси, Э. М., Мерфи, Б., O'sullivan, L., et al. (2015). В кишечнике новорожденных обитают различные штаммы бифидобактерий. Arch. Дис. Ребенок. Fetal Neonatal Ed. 100, F405 – F410. DOI: 10.1136 / archdischild-2014-306110

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Боттачини Ф., Мазервэй М. О., Куцински Дж., О'Коннелл К. Дж., Серафини Ф., Дуранти С. и др. (2014). Сравнительная геномика таксона Bifidobacterium breve . BMC Genom. 15: 170. DOI: 10.1186 / 1471-2164-15-170

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кауфилд П. В., Каттер Г. Р. и Дасанаяке А. П. (1993). Первоначальное приобретение стрептококков mutans младенцами: свидетельство дискретного окна инфекционности. J. Dent. Res. 72, 37–45. DOI: 10.1177 / 00220345930720010501

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Коппа, Г. В., Габриэлли, О., Зампини, Л., Галеацци, Т., Фиккаденти, А., Паделла, Л., и другие. (2011). Олигосахариды в 4 различных группах молока, бифидобактерии и Ruminococcus obeum . J. Pediatr. Гастроэнтерол. Nutr. 53, 80–87. DOI: 10.1097 / MPG.0b013e3182073103

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кридер К. С., Янг Т. П., Берри Р. Дж. И Бейли Л. Б. (2012). Фолиевая кислота и метилирование ДНК: обзор молекулярных механизмов и доказательства роли фолиевой кислоты. Adv. Nutr. 3, 21–38. DOI: 10.3945 / ан.111,000992

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Д'Аиммо, М. Р., Маттарелли, П., Биавати, Б., Карлссон, Н. Г., и Андлид, Т. (2012). Потенциал бифидобактерий как источника естественного фолата. J. Appl. Microbiol. 112, 975–984. DOI: 10.1111 / j.1365-2672.2012.05261

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Дубос Р., Сэвидж Д., Шедлер Р. и биологический фрейдизм (1966). Длительные эффекты ранних воздействий окружающей среды. Педиатрический 38, 789–800.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Фавье, К. Ф., Воган, Э. Э., Де Вос, В. М., и Аккерманс, А. Д. Л. (2002). Молекулярный мониторинг сукцессии бактериальных сообществ у новорожденных человека. Заявл. Environ. Microbiol. 68, 219–226. DOI: 10.1128 / AEM.68.1.219-226.2002

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гарридо Д., Даллас Д. К. и Миллс Д. А. (2013). Потребление гликоконъюгатов грудного молока младенческими бифидобактериями: механизмы и последствия. Микробиология 159, 649–664. DOI: 10.1099 / mic.0.064113-0

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гибсон Р. А. (1999). Длинноцепочечные полиненасыщенные жирные кислоты и развитие младенцев. Ланцет 354, 1919–1920. DOI: 10.1016 / S0140-6736 (99) 00300-1

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст

Гор К., Манро К., Лэй К., Бибилони Р., Моррис Дж., Вудкок А. и др. (2008). Bifidobacterium pseudocatenulatum ассоциируется с атопической экземой: исследование «случай-контроль», посвященное изучению фекальной микробиоты младенцев. J. Allergy. Clin. Иммунол. 121, 135–140. DOI: 10.1016 / j.jaci.2007.07.061

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Harmsen, H.J., Wildeboer-Veloo, A.C., Raangs, G.C., Wagendorp, A.A., Klijn, N., Bindels, J.G., et al. (2000). Анализ развития кишечной флоры у детей, находящихся на грудном вскармливании и на искусственном вскармливании, с использованием методов молекулярной идентификации и обнаружения. J. Pediatr. Гастроэнтерол. Nutr. 30, 61–67. DOI: 10.1097 / 00005176-200001000-00019

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Янсен, Г.J., Wildeboer-Veloo, A.C., Tonk, R.H., Franks, A.H., Welling, G.W. (1999). Разработка и валидация автоматизированного метода на основе микроскопии для подсчета групп кишечных бактерий. J. Microbiol. Методы 37, 215–221. DOI: 10.1016 / S0167-7012 (99) 00049-4

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кунц, К., Рудлофф, С., Байер, В., Кляйн, Н., и Штробель, С. (2000). Олигосахариды в материнском молоке: структурные, функциональные и метаболические аспекты. Annu. Ред. . Microbiol. 20, 699–722. DOI: 10.1146 / annurev.nutr.20.1.699

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лакофф А., Фазили З., Ауфрейтер С., Пфайффер К. М., Коннолли Б., Грегори, Дж. Ф. и др. (2014). Фолат всасывается через толстую кишку человека: данные получены с использованием капсул с энтеросолюбильным покрытием, содержащих 13 C-меченный [6S] -5-формилтетрагидрофолат. Am. Дж. Клин . Nutr. 100, 1278–1286. DOI: 10.3945 / ajcn.114.091785

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ли Ю.и Кауфилд П. В. (1995). Верность первоначального приобретения стрептококков mutans младенцами от их матерей. J. Dent. Res. 74, 681–685. DOI: 10.1177 / 00220345950740020901

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Локацио, Р. Г., Десаи, П., Села, Д. А., Веймер, Б., и Миллс, Д. А. (2010). Широкая консервация генов утилизации молока у Bifidobacterium longum subsp. infantis, выявленные сравнительной геномной гибридизацией.Прил. Environ. Microbiol. 76, 7373–7381. DOI: 10.1128 / AEM.00675-10

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Мариат Д., Фирмессе О., Левенес Ф., Гимарайнш В. Д., Сокол Х., Доре Дж. И др. (2009). Соотношение Firmicutes / Bacteroidetes в микробиоте человека меняется с возрастом. BMC Microbiol. 9: 123. DOI: 10.1186 / 1471-2180-9-123

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Маккартни, А.Л., Вэньчжи В. и Таннок Г. В. (1996). Молекулярный анализ состава бифидобактериальной и лактобактериальной микрофлоры человека. Заявл. Окружающая среда . Microbiol. 62, 4608–4613.

Google Scholar

Мелдрам, С. Дж., Д'Ваз, Н., Симмер, К., Данстан, Дж. А., Хирд, К., и Прескотт, С. Л. (2012). Влияние приема высоких доз рыбьего жира в раннем младенчестве на развитие нервной системы и язык: рандомизированное контролируемое исследование. Br. J . Nutr. 108, 1443–1454. DOI: 10.1017 / S0007114511006878

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Милани К., Лугли Г. А., Туррони Ф., Манкабелли Л., Дуранти С., Виаппиани А. и др. (2014). Оценка состава сообщества бифидобактерий в кишечнике человека с помощью протокола целевого секвенирования ампликонов (ITS). FEMS Microbiol. Ecol. 90, 493–503. DOI: 10.1111 / 1574-6941.12410

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

О'Каллаган, А., Боттачини Ф., Мазервэй М. О. и ван Синдерен Д. (2015). Пангеномный анализ Bifidobacterium longum и сайт-направленный мутагенез путем обхода систем рестрикции-модификации. BMC Genom. 16: 832. DOI: 10.1186 / s12864-015-1968-4

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Пачеко А. Р., Бариле Д., Андервуд М. А. и Миллс Д. А. (2015). Влияние гликобиома молока на микробиоту кишечника новорожденных. Ann.Rev. Anim. Sci. 3, 419–445. DOI: 10.1146 / annurev-animal-022114-111112

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Рухаак, Л. Р., Стробл, К., Андервуд, М. А., и Лебрилла, К. Б. (2014). Обнаружение олигосахаридов молока в плазме младенцев. Анал. Биоанал. Chem. 406, 5775–5784. DOI: 10.1007 / s00216-014-8025-z

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Села, Д. А., Чепмен, Дж., Адеуя, А., Ким, Дж.Х., Чен Ф., Уайтхед Т. Р. и др. (2008). Последовательность генома Bifidobacterium longum subsp. infantis раскрывает адаптацию к усвоению молока в микробиоме младенца. Proc. Natl. Акад. Sci.U.S.A. 2, 18964–18969. DOI: 10.1073 / pnas.0809584105

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Свеннерхольм, Л., Бострем, К., Фредман, П., Манссон, Дж. Э., Розенгрен, Б., и Ринмарк, Б. М. (1989). Ганглиозиды головного мозга человека: изменения в развитии от ранней стадии плода до пожилого возраста. Biochim. Биофиз. Acta 1005, 109–117. DOI: 10.1016 / 0005-2760 (89)

-6

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Таннок, Г. В., Лоули, Б., Манро, К., Патманатан, С. Г., Чжоу, С. Дж., Макридес, М., и др. (2013). Сравнение составов микробиоты стула младенцев, которых кормили смесью из козьего молока, смесью на основе коровьего молока или грудным молоком. Заявл. Environ. Microbiol. 79, 3040–3048. DOI: 10.1128 / AEM.03910-12

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Туррони, Ф., Bottacini, F., Foroni, E., Mulder, I., Kim, J.-H., Zomer, A., et al. (2010). Анализ генома Bifidobacterium bifidum PRL2010 выявляет метаболические пути для кормления гликанов хозяина. Proc. Natl. Акад. Sci. США 107, 19514–19519. DOI: 10.1073 / pnas.1011100107

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст

Turroni, F., Peano, C., Pass, D. A., Foroni, E., Severgnini, M., Claesson, M. J., et al. (2012). Разнообразие бифидобактерий в кишечной микробиоте младенцев. PLoS ONE 7: e36957. DOI: 10.1371 / journal.pone.0036957

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Уай Р., Мена П. и Пейрано П. (2001). Механизмы воздействия питательных веществ на развитие мозга и познание. Nestle Nutr. Мастерская Сер. Clin. Выполните программу 5, 41–70. DOI: 10.1159 / 000061845

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Uauy, R., and Peirano, P. (1999). Лучше всего грудь: грудное молоко - оптимальная пища для развития мозга. амер. J. Clin. Nutr. 70, 433–434.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Ван Б., МакВиг П., Петоч П. и Бранд-Миллер Дж. (2003). Ганглиозид головного мозга и гликопротеин сиаловая кислота у детей, находящихся на грудном вскармливании, по сравнению с младенцами, вскармливаемыми смесями. Am. J. Clin. Nutr. 78, 1024–1029.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Ван Б., Миллер Дж. Б., Макнейл Ю. и Маквей П. (1998). Концентрация сиаловой кислоты в ганглиозидах головного мозга: колебания среди восьми видов млекопитающих. Комп. Биохим. Physiol. Мол. Интегр. Physiol. 19, 435–439. DOI: 10.1016 / S1095-6433 (97) 00445-5

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Веллинг, Г. У., Эльфферих, П., Раанг, Г. К., Вильдебур-Велу, А. К., Янсен, Г. Дж., И Дегенер, Дж. Э. (1997). 16S рибосомные РНК-taggd олигонуклеотидные зонды для мониторинга бактерий кишечного тракта. Сканд. J. Gastroenterol. 222, 17–19. DOI: 10.1080 / 00365521.1997.11720711

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Яцуненко, Т., Рей Ф. Э., Манари М. Дж., Трехан И., Домингес-Белло М. Г., Контрерас М. и др. (2012). Микробиом кишечника человека в зависимости от возраста и географии. Природа 486, 222–227. DOI: 10.1038 / nature11053

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Янг, С. Л., Саймон, М. А., Бэрд, М. А., Тэннок, Г. В., Бибилони, Р., Спенсели, К. и др. (2004). Виды бифидобактерий по-разному влияют на экспрессию маркеров клеточной поверхности и цитокинов дендритных клеток, собранных из пуповинной крови. Clin. Диаг. Лаборатория. Иммунол. 11, 686–690. DOI: 10.1128 / cdli.11.4.686-690.2004

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Зоетендал, Э. Г., Бен-Амор, К., Аккерманс, А. Д., Аби, Т., и де Вос, В. М. (2001). Протоколы выделения ДНК влияют на предел обнаружения подходов ПЦР бактерий в образцах из желудочно-кишечного тракта человека. Syst. Прил. Microbiol. 24, 405–410. DOI: 10.1078 / 0723-2020-00060

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Зоетендаль, Э.Г., фон Райт, А., Вилпонен-Самела, Т., Бен-Амор, К., Аккерманс, А. Д., и де Вос, В. М. (2002). Бактерии, связанные со слизистой оболочкой желудочно-кишечного тракта человека, равномерно распределены по толстой кишке и отличаются от сообщества, выделенного из фекалий. Заявл. Environ. Microbiol. 68, 3401–3407. DOI: 10.1128 / AEM.68.7.3401-3407.2002

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

добавок бифидобактерий колонизируют кишечник младенцев, находящихся на грудном вскармливании - ScienceDaily

Добавление активированных младенцев на грудном вскармливании Bifidobacterium infantis ( B.Infantis ) положительно влияли на микробы кишечника младенцев на срок до года, согласно недавнему исследованию, проведенному учеными из Калифорнийского университета в Дэвисе и Evolve BioSystems Inc. Американское общество питания в Бостоне Бетани Хенрик, директор по иммунологии и диагностике Evolve BioSystems, от имени соисследователя исследования Дженнифер Смиловиц, заместителя директора по исследованиям на людях в Институте пищевых продуктов для здоровья Калифорнийского университета в Дэвисе.

Присутствие B. infantis в кишечнике младенцев связано с пользой для здоровья, и эти бактерии питаются грудным молоком. Однако эти полезные бактерии присутствуют в значительно более низких количествах у младенцев, находящихся на грудном вскармливании, в развитых странах, чем в развивающихся странах.

Матери и младенцы, участвовавшие в исследовании, получали либо B. infantis для подготовки и поддержки лактации, либо только поддержку лактации в период от семи до 21 дня после рождения.Бактерии быстро прижились у младенцев, вытесняя другие кишечные бактерии, которые связаны с кишечными проблемами и иммунными заболеваниями, такими как астма, аллергия и аутоиммунные заболевания. Кроме того, добавление B. infantis также изменило биохимический состав детских фекалий. Эти благоприятные изменения продолжались до года у младенцев, которые в основном находились на грудном вскармливании.

Эти результаты предлагают возможный метод улучшения здоровья кишечного микробиома и предотвращения иммунных заболеваний у младенцев, находящихся на грудном вскармливании, в развитых странах.

иметь значение: спонсируемая возможность


История Источник:

Материалы предоставлены Калифорнийским университетом - Дэвис . Примечание. Содержимое можно редактировать по стилю и длине.


Цитируйте эту страницу :

Калифорнийский университет - Дэвис. «Добавка бифидобактерий колонизирует кишечник младенцев, находящихся на грудном вскармливании."ScienceDaily. ScienceDaily, 9 июня 2018 г. .

Калифорнийский университет - Дэвис. (2018, 9 июня). Добавка бифидобактерий колонизирует кишечник младенцев, находящихся на грудном вскармливании. ScienceDaily . Получено 13 марта 2021 г. с сайта www.sciencedaily.com/releases/2018/06/180609194242.htm

.

Калифорнийский университет - Дэвис. «Добавка бифидобактерий колонизирует кишечник младенцев, находящихся на грудном вскармливании». ScienceDaily. www.sciencedaily.com / Release / 2018/06 / 180609194242.htm (по состоянию на 13 марта 2021 г.).


B. infantis уменьшает воспаление кишечника у младенцев

В недавнем исследовании, опубликованном в Pediatric Research , исследователи продемонстрировали, что колонизация младенцев определенным штаммом пробиотических бактерий - B. infantis EVC001 - уменьшает воспаление кишечника до 55 раз по сравнению с младенцами, получающими только грудное молоко.

Марк Андервуд, профессор педиатрии и заведующий неонатологией детской больницы Калифорнийского университета в Дэвисе

Предыдущие исследования показали, что Bifidobacterium longum infantis (B.Infantis), штамм бактерий, естественным образом обитающих в кишечнике младенцев, практически уничтожен у младенцев, рожденных в промышленно развитых странах. Считается, что это резкое снижение заболеваемости B. infantis связано с современными методами здравоохранения, такими как увеличение использования антибиотиков, кормление смесью и родоразрешение.

Исследователи предполагают, что недостаток B. infantis в кишечнике может быть причиной недавнего роста аутоиммунных заболеваний.

«Если отсутствие B. infantis сыграло роль в росте заболеваний, связанных с воспалением, повторное введение его в раннем возрасте могло бы значительно снизить частоту возникновения некоторых из этих состояний», - сказал Марк Андервуд, соавтор исследования, и профессор педиатрии и заведующий неонатологией детской больницы Калифорнийского университета в Дэвисе.

B. infantis и воспаление кишечника

В ходе исследования было изучено 37 семейств бактерий, обычно встречающихся в кишечнике младенцев, включая семейства, содержащие штаммы бактерий, продаваемые в качестве пищевых добавок. Bifidobacteriaceae были единственным семейством кишечных бактерий, которое, как было обнаружено, коррелировало со значительным снижением ключевых маркеров воспаления.

Медицинские работники ищут признаки воспаления кишечника, измеряя ключевые маркеры, такие как цитокины, кальпротектин и эндотоксин.Исследование показало, что младенцы, получавшие B. infantis EVC001, вырабатывали значительно более низкие уровни этих трех маркеров по сравнению с младенцами в контрольной группе.

Младенцы, колонизированные B. infantis EVC001, показали значительное снижение провоспалительных цитокинов - пептидов, связанных с повышенной кишечной проницаемостью, состоянием, которое может влиять на развитие диабета 1 типа.